| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 第1章 绪论 | 第12-42页 |
| 1.1 生物传感概述 | 第12-14页 |
| 1.2 荧光生物传感 | 第14-25页 |
| 1.2.1 直接荧光法 | 第14-20页 |
| 1.2.2 荧光共振能量转移分析法 | 第20-22页 |
| 1.2.3 电子转移荧光法 | 第22-23页 |
| 1.2.4 光诱导电子转移荧光分析法 | 第23-25页 |
| 1.3 信号放大技术荧光生物传感 | 第25-40页 |
| 1.3.1 基于酶辅助信号放大的荧光生物传感 | 第25-37页 |
| 1.3.2 非酶信号放大的荧光生物传感 | 第37-40页 |
| 1.4 本论文的选题目的和研究内容 | 第40-42页 |
| 第2章 线性DNA信号探针结合滚环扩增构建荧光生物传感高灵敏度检测DNA | 第42-58页 |
| 2.1 引言 | 第42-43页 |
| 2.2 实验部分 | 第43-46页 |
| 2.2.1 试剂与仪器 | 第43-45页 |
| 2.2.2 实验步骤 | 第45-46页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第46-55页 |
| 2.3.1 滚环扩增(RCA)荧光生物传感检测DNA的实验原理 | 第46-47页 |
| 2.3.2 原理验证 | 第47-51页 |
| 2.3.3 实验条件的优化 | 第51-53页 |
| 2.3.4 滚环扩增荧光猝灭法检测DNA的线性范围 | 第53-54页 |
| 2.3.5 滚环扩增荧光猝灭法检测DNA的方法选择性研究 | 第54-55页 |
| 2.4 本章小结 | 第55-58页 |
| 第3章 基于光诱导电子转移和滚环扩增技术的荧光猝灭法高灵敏度检测miRNA | 第58-74页 |
| 3.1 引言 | 第58-59页 |
| 3.2 实验部分 | 第59-62页 |
| 3.2.1 试剂与仪器 | 第59-61页 |
| 3.2.2 实验步骤 | 第61-62页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第62-71页 |
| 3.3.1 滚环扩增(RCA)荧光生物传感检测miRNA的实验原理 | 第62-63页 |
| 3.3.2 原理验证 | 第63-66页 |
| 3.3.3 锁式探针的设计 | 第66-67页 |
| 3.3.4 实验条件的优化 | 第67-69页 |
| 3.3.5 滚环扩增荧光猝灭法检测miRNA的线性范围和检出限 | 第69页 |
| 3.3.6 肿瘤细胞及血清中miRNA-433的检测 | 第69-71页 |
| 3.3.7 基于PET滚环扩增荧光猝灭法检测miRNA的方法选择性研究 | 第71页 |
| 3.4 本章小结 | 第71-74页 |
| 第4章 基于核酸外切酶Ⅲ辅助信号放大和脂质体信号放大的一步双放大荧光生物传感高灵敏度的检测DNA | 第74-90页 |
| 4.1 引言 | 第74-75页 |
| 4.2 实验部分 | 第75-78页 |
| 4.2.1 试剂与仪器 | 第75-76页 |
| 4.2.2 实验步骤 | 第76-78页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第78-88页 |
| 4.3.1 包裹信号试剂脂质体的性能表征及其释放剂的选择 | 第78-81页 |
| 4.3.2 双信号放大荧光生物传感检测DNA的实验原理 | 第81-82页 |
| 4.3.3 原理验证 | 第82-83页 |
| 4.3.4 实验条件的优化 | 第83-85页 |
| 4.3.5 双信号放大荧光生物传感检测DNA的线性范围和检出限 | 第85-86页 |
| 4.3.6 双信号放大荧光生物传感的选择性研究以及实际样品的检测 | 第86-88页 |
| 4.4 本章小结 | 第88-90页 |
| 第5章 酶催化合成dsDNA为模板原位形成CuNCs的荧光生物传感检测末端脱氧核苷酸转移酶活性 | 第90-110页 |
| 5.1 引言 | 第90-91页 |
| 5.2 实验部分 | 第91-93页 |
| 5.2.1 试剂与仪器 | 第91-92页 |
| 5.2.2 TdT的DNA聚合反应 | 第92-93页 |
| 5.2.3 荧光法检测TdT活性 | 第93页 |
| 5.2.4 TdT聚合产物的变性聚丙烯酰胺凝胶电泳分析 | 第93页 |
| 5.2.5 聚合反应消耗dNTP量的HPLC分析 | 第93页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第93-108页 |
| 5.3.1 dsDNA-CuNCs荧光法检测TdT活性的实验原理 | 第93-96页 |
| 5.3.2 dTTP生物传感和dATP-dTTP生物传感灵敏度的比较与探讨 | 第96-98页 |
| 5.3.3 原理验证 | 第98-100页 |
| 5.3.4 实验条件的优化 | 第100-104页 |
| 5.3.5 荧光生物传感检测TdT活性的灵敏度与选择性考察 | 第104-106页 |
| 5.3.6 TdT抑制剂的考察 | 第106-107页 |
| 5.3.7 CEM细胞中TdT活性的检测 | 第107-108页 |
| 5.4 本章小结 | 第108-110页 |
| 第6章 基于dsDNA功能化磁性微球高灵敏检测核酸内切酶EcoRI的活性 | 第110-124页 |
| 6.1 引言 | 第110-111页 |
| 6.2 实验部分 | 第111-114页 |
| 6.2.1 试剂与仪器 | 第111-113页 |
| 6.2.2 实验步骤 | 第113-114页 |
| 6.3 结果与讨论 | 第114-123页 |
| 6.3.1 荧光生物传感检测EcoRI活性的实验原理 | 第114-116页 |
| 6.3.2 生物传感高灵敏度探究 | 第116-118页 |
| 6.3.3 原理验证 | 第118-119页 |
| 6.3.4 实验条件的优化 | 第119-120页 |
| 6.3.5 限制性内切酶EcoRI活性检测的灵敏度与线形范围 | 第120-121页 |
| 6.3.6 荧光传感方法选择性的考察 | 第121-122页 |
| 6.3.7 限制性内切酶EcoRI抑制剂的考察 | 第122-123页 |
| 6.4 本章小结 | 第123-124页 |
| 结论 | 第124-126页 |
| 参考文献 | 第126-162页 |
| 致谢 | 第162-164页 |
| 攻读博士学位期间的研究成果 | 第164-165页 |
