| 缩写词表 | 第1-9页 |
| 摘要 | 第9-11页 |
| Abstract | 第11-13页 |
| 前言 | 第13-15页 |
| 第一章 胚胎干细胞体外神经定向分化模型的建立及验证 | 第15-26页 |
| 1 材料和方法 | 第15-19页 |
| ·仪器与试剂 | 第15-16页 |
| ·培养基的配制 | 第16页 |
| ·方法 | 第16-19页 |
| ·模型建立 | 第16-17页 |
| ·模型验证 | 第17-19页 |
| ·利用Real-Time PCR检测神经标记表达基因表达 | 第17-18页 |
| ·利用免疫组织化学方法检测多巴胺能神经元特异蛋白表达 | 第18页 |
| ·选用多巴胺能神经元选择性毒素MPTP逆向检测多巴胺能神经元的存在- | 第18-19页 |
| ·利用高效液相色谱法检测多巴胺水平分泌 | 第19页 |
| ·数据处理及统计学分析 | 第19页 |
| 2 结果 | 第19-24页 |
| ·神经标记基因表达 | 第19-21页 |
| ·巢蛋白抗体和酪氨酸羟化酶的表达 | 第21-22页 |
| ·多巴胺能神经元选择性毒物逆向检测多巴胺能神经元的存在 | 第22-23页 |
| ·高效液相色谱法检测多巴胺分泌 | 第23-24页 |
| 3 讨论 | 第24-26页 |
| 第二章 PBDEs对体外神经分化控制基因的影响,以及甲状腺素的作用 | 第26-44页 |
| 1 材料和方法 | 第26-29页 |
| ·仪器与试剂 | 第26-27页 |
| ·方法 | 第27-29页 |
| ·细胞培养及处理 | 第27页 |
| ·多溴联苯醚的处理及剂量设置 | 第27页 |
| ·甲状腺素的剂量设置 | 第27页 |
| ·Real-Time PCR检测分化控制基因表达 | 第27-29页 |
| ·数据处理及统计学分析 | 第29页 |
| 2 结果 | 第29-43页 |
| ·无甲状腺素作用下,PBDEs对神经发育相关基因的影响 | 第29-31页 |
| ·有甲状腺素作用下,PBDEs对神经发育相关基因的影响 | 第31-43页 |
| 3 讨论 | 第43-44页 |
| 第三章 PBDEs对神经分化过程的氧化应激作用、凋亡诱导作用,甲状腺激素对此过程的影响 | 第44-67页 |
| 1 材料和方法 | 第44-47页 |
| ·仪器与试剂 | 第44-45页 |
| ·方法 | 第45-47页 |
| ·细胞培养及处理 | 第45页 |
| ·氧化应激所需细胞样品收集 | 第45页 |
| ·氧化负荷水平检测 | 第45-46页 |
| ·抗氧化能力检测 | 第46页 |
| ·凋亡检测细胞前处理 | 第46页 |
| ·Annexin FITC/PI双染法、流式细胞术检测凋亡率 | 第46-47页 |
| ·数据处理及统计学分析 | 第47页 |
| 2 结果 | 第47-66页 |
| ·PBDEs对细胞氧化负荷和抗氧化能力的影响,以及甲状腺素对此的作用 | 第47-49页 |
| ·甲状腺素作用下,PBDEs对细胞氧化负荷和抗氧化能力的影响 | 第49-57页 |
| ·PBDEs诱发凋亡状况 | 第57-66页 |
| 3 讨论 | 第66-67页 |
| 第四章 PBDEs对神经分化的细胞毒性,以及甲状腺激素的作用 | 第67-75页 |
| 1 材料和方法 | 第67-69页 |
| ·仪器与试剂 | 第67-68页 |
| ·方法 | 第68页 |
| ·细胞培养及处理 | 第68页 |
| ·细胞样品收集 | 第68页 |
| ·细胞膜唾液酸含量检测 | 第68页 |
| ·细胞膜钠钾ATP酶(Na+-K+ ATPase)活性检测 | 第68页 |
| ·细胞膜钙镁ATP酶(Ca2+-Mg2-ATPase)活性检测 | 第68页 |
| ·数据处理及统计学分析 | 第68-69页 |
| 2 结果 | 第69-74页 |
| ·PBDEs对唾液酸含量的影响,以及甲状腺素对此的作用 | 第69页 |
| ·PBDEs对钠钾ATP酶活力的影响,以及甲状腺素对此的作用 | 第69页 |
| ·PBDEs对钙镁ATP酶活力的影响,以及甲状腺素对此的作用 | 第69-74页 |
| 3 讨论 | 第74-75页 |
| 第五章 PBDEs对神经分化中突触延伸和突触联系建立的影响,以及甲状腺激素对此过程的影响 | 第75-92页 |
| 1 材料和方法 | 第75-78页 |
| ·仪器与试剂 | 第75-76页 |
| ·方法 | 第76-77页 |
| ·细胞培养及处理 | 第76页 |
| ·PBDEs对神经元突触延伸和突触联系建立的影响,甲状腺激素对此的影响 | 第76-77页 |
| ·免疫荧光技术(Immunofluorescence technique,IF)测量树突与轴突的长度 | 第76-77页 |
| ·免疫荧光技术(Immunofluorescence technique,IF)检测突触前蛋白synapsin-1和突触后蛋白PSD-95的密度 | 第77页 |
| ·数据统计分析 | 第77-78页 |
| 2 结果 | 第78-91页 |
| ·PBDEs对神经分化中树突、轴突长度的影响,以及甲状腺素对此的作用 | 第78-84页 |
| ·PBDEs对突触前蛋白synapsin-1和突触后蛋白PSD-95表达的影响,以及甲状腺素对此的作用 | 第84-91页 |
| 3 讨论 | 第91-92页 |
| 全文结论 | 第92-93页 |
| 参考文献 | 第93-98页 |
| 致谢 | 第98-99页 |
| 个人简历 | 第99-100页 |
| 论著 | 第100-113页 |
