| 摘要 | 第1-8页 |
| Abstract | 第8-10页 |
| 缩略词表 | 第10-11页 |
| 第一章 文献综述 | 第11-18页 |
| ·研究问题的由来 | 第11页 |
| ·CDPKs的结构特点 | 第11-12页 |
| ·CDPKs的调控机制 | 第12-13页 |
| ·CDPKs的表达特性 | 第13-14页 |
| ·CDPKs的底物及磷酸化位点 | 第14页 |
| ·CDPKs在植物中的生物学功能 | 第14-15页 |
| ·OsCDPK12&24 研究现状 | 第15-17页 |
| ·OsCDPK12 | 第15-16页 |
| ·OsCDPK24 | 第16-17页 |
| ·研究的目的与意义 | 第17-18页 |
| 第二章 水稻CDPK12 基因启动子的表达模式及其逆境应答元件分析 | 第18-40页 |
| 1 材料与方法 | 第19-26页 |
| ·实验材料 | 第19页 |
| ·实验试剂 | 第19页 |
| ·启动子的克隆及植物表达载体的构建 | 第19-20页 |
| ·构建 12P启动子不同长度缺失体及其植物表达载体 | 第20-22页 |
| ·农杆菌介导的遗传转化和转基因植株的阳性检测 | 第22-23页 |
| ·GUS组织化学分析 | 第23页 |
| ·GUS定量测定 | 第23-26页 |
| ·相关试剂准备 | 第24页 |
| ·总蛋白的提取 | 第24-25页 |
| ·总蛋白浓度测定 | 第25页 |
| ·GUS活性测定 | 第25-26页 |
| ·启动子 12P不同缺失材料的胁迫处理 | 第26页 |
| 2 结果与分析 | 第26-38页 |
| ·启动子 12P及其缺失体的克隆、表达载体的构建及遗传转化 | 第26-27页 |
| ·12P及其缺失体转基因植株的GUS组织化学染色 | 第27-29页 |
| ·启动子 12P 序列及其缺失体序列的顺式作用元件分析 | 第29-36页 |
| ·12P687缺失片段转基因植株的GUS定量测定 | 第36页 |
| ·启动子 12P缺失材料经冷、低氮、高盐胁迫处理后的GUS组织化学染色分析 | 第36-38页 |
| 3 讨论 | 第38-40页 |
| 第三章 水稻CDPKs与GRXs的蛋白互作分析 | 第40-60页 |
| 1 材料与方法 | 第40-48页 |
| ·实验材料 | 第40-41页 |
| ·实验试剂 | 第41页 |
| ·水稻GRXs序列的克隆及AD-OsGRXm载体的构建 | 第41-44页 |
| ·水稻CDPKs序列的克隆及BD-OsCDPKn载体的构建 | 第44-46页 |
| ·酵母转化 | 第46-48页 |
| ·相关试剂准备 | 第46-47页 |
| ·酵母共转化 | 第47页 |
| ·自激活检测 | 第47-48页 |
| ·酵母点对点互作验证 | 第48页 |
| 2 结果与分析 | 第48-58页 |
| ·水稻GRXs序列的克隆 | 第48-49页 |
| ·水稻GRXs序列与pGADT7 重组质粒的构建 | 第49-50页 |
| ·AD-OsGRXm的自激活检测 | 第50-51页 |
| ·OsCDPK24 与水稻GRXs的蛋白互作验证 | 第51-52页 |
| ·水稻CDPKs序列的克隆 | 第52页 |
| ·水稻CDPKs序列与pGBKT7 重组质粒的构建 | 第52-54页 |
| ·BD-OsCDPKn的自激活检测 | 第54-55页 |
| ·水稻CDPKs与GRXs的蛋白互作验证 | 第55-57页 |
| ·OsGRX8、OsGRX14、OsGRX16、OsGRX26、OsGRX28 的氨基酸序列比对 | 第57-58页 |
| 3 讨论 | 第58-60页 |
| 参考文献 | 第60-66页 |
| 附录 1 OsCDPK12 的核苷酸序列 | 第66-67页 |
| 附录 2 OsCDPK12 启动子的核苷酸序列 | 第67-68页 |
| 附录 3 水稻中的29个GRXs基因信息 | 第68-69页 |
| 附录 4 水稻CDPKs与GRXs蛋白的互作验证结果补充 | 第69-74页 |
| 附录 5 个人简历 | 第74-75页 |
| 致谢 | 第75页 |
