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DNMT3A与组蛋白H4R3对称性甲基化(H4R3me2s)结合研究

中文摘要第1-7页
Abstract第7-10页
第一章 文献综述第10-26页
 1. α,β--globin基因簇概述第10-12页
 2. β-globin基因与疾病第12-13页
 3. DNA甲基化第13-17页
   ·DNA甲基化概述第13-16页
   ·DNA甲基化与β-globin基因的表达调控第16-17页
 4. DNA甲基化酶(DNMTs)第17-23页
   ·DNMTs概述第17-19页
   ·DMT3A概述第19-23页
 5. 组蛋白修饰第23-26页
   ·组蛋白修饰概述第23-24页
   ·组蛋白修饰与β-globin基因的表达调控第24-26页
第二章 材料与方法第26-44页
 1. 前言第26-29页
 2. 实验试剂与仪器第29页
   ·实验试剂第29页
   ·实验仪器第29页
 3. 实验方法第29-44页
   ·计算机模拟DNMT3A与H4R3me2s的结合结构图第29-30页
   ·人类DNMT3A基因克隆第30-32页
   ·DNMT3A突变体的构建第32-34页
   ·ADD3A野生型和突变型原核表达载体的构建第34-35页
   ·蛋白表达与纯化第35-36页
   ·peptide pull down assay第36-37页
   ·DNMT3A真核表达载体的选择第37-39页
   ·突变体的真核表达载体构建第39-40页
   ·野生型和突变体DNMT3A过表达的K562细胞株的构建第40页
   ·γ-gene的mRNA水平检测第40-41页
   ·DNA甲基化分析第41-42页
   ·蛋白质免疫共沉降(co-IP)第42-44页
第三章 实验结果与讨论第44-62页
 第一节 D529A突变减弱ADD_(3A)与H4R3me2s结合第44-55页
  1. 计算机模拟结果第44页
  2. DNMT3A的克隆第44-46页
  3. DNMT3A定点氨基酸突变体的构建第46-47页
  4. 原核表达载体的构建第47-49页
  5. GST-ADD_(3A)的诱导与纯化第49页
  6. His-ADD_(3A)的诱导与纯化第49-51页
  7. Peptide pull down assays第51-53页
  讨论第53-55页
 第二节 DNMT3A-D529A突变对γ-globin表达影响第55-62页
  1. 真核表达载体的构建与选择第55-57页
  2. 稳定细胞株的构建第57页
  3. γ-gene mRNA水平第57页
  4. 甲基化水平第57-59页
  5. PRMT5与DNMT3A的结合第59-60页
  讨论第60-62页
全文总结第62-63页
参考文献第63-71页
附录一第71-73页
附录二第73-80页
致谢第80-81页

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