| 英文缩写词表 | 第10-11页 |
| 摘要 | 第11-12页 |
| Abstract | 第12-13页 |
| 1 文献综述 | 第14-28页 |
| 1.1 冷应激研究概况 | 第14-17页 |
| 1.2 miRNA功能研究概况 | 第17-24页 |
| 1.3 Bcl2 抗凋亡功能的研究概括 | 第24-25页 |
| 1.4 冷应激与miRNA | 第25-26页 |
| 1.5 目的与意义 | 第26-28页 |
| 2 材料与方法 | 第28-44页 |
| 2.1 急性冷暴露对大鼠肝脏组织氧化应激指标和凋亡蛋白的影响 | 第28-33页 |
| 2.1.1 主要仪器设备 | 第28页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第28页 |
| 2.1.3 实验动物与分组 | 第28-29页 |
| 2.1.4 实验动物处理与肝脏组织采集 | 第29页 |
| 2.1.5 大鼠肝脏组织中脂质过氧化(MDA)的检测 | 第29-30页 |
| 2.1.6 大鼠肝脏组织中总谷胱甘肽过氧化物酶(GPx)的检测 | 第30-31页 |
| 2.1.7 蛋白质免疫印迹 | 第31-33页 |
| 2.2 急性暴露对大鼠肝脏组织中miR-383 表达的影响 | 第33-36页 |
| 2.2.1 主要仪器和试剂 | 第33页 |
| 2.2.2 主要试剂 | 第33页 |
| 2.2.3 实验动物与分组 | 第33-34页 |
| 2.2.4 样品采集 | 第34页 |
| 2.2.5 qRT-PCR | 第34-36页 |
| 2.2.6 miR-383 的生物学功能预测 | 第36页 |
| 2.3 miR-383 对氧化损伤大鼠肝细胞的影响 | 第36-42页 |
| 2.3.1 主要仪器设备 | 第36页 |
| 2.3.2 大鼠肝细胞系(BRL)的培养和处理 | 第36-38页 |
| 2.3.3 miRNA转染和大鼠肝细胞分组 | 第38-39页 |
| 2.3.4 大鼠肝细胞总RNA的提取及荧光定量PCR检测 | 第39-40页 |
| 2.3.5 大鼠肝细胞凋亡率的检测 | 第40页 |
| 2.3.6 ROS检测 | 第40页 |
| 2.3.7 大鼠肝细胞线粒体膜电位的检测 | 第40-41页 |
| 2.3.8 miR-383 靶点的验证 | 第41-42页 |
| 2.4 统计分析 | 第42-44页 |
| 3 结果与分析 | 第44-62页 |
| 3.1 急性冷暴露对大鼠肝脏组织氧化应激指标和凋亡蛋白的影响 | 第44-46页 |
| 3.1.1 急性冷暴露对大鼠肝脏组织中氧化应激指标的影响 | 第44-45页 |
| 3.1.2 急性冷暴露对大鼠肝脏组织中凋亡蛋白的影响 | 第45-46页 |
| 3.2 急性冷暴露对大鼠肝脏组织中miR-383 表达的影响 | 第46-49页 |
| 3.2.1 miR-383 在急性冷暴露大鼠肝脏组织中表达情况 | 第46-47页 |
| 3.2.2 miR-383 的生物学功能分析 | 第47-49页 |
| 3.3 miR-383 对氧化应激大鼠肝细胞的影响 | 第49-62页 |
| 3.3.1 miR-383 在大鼠肝细胞中上调和下调条件的确定 | 第49-50页 |
| 3.3.2 过氧化氢刺激对大鼠肝脏细胞凋亡率和ROS水平的影响 | 第50-52页 |
| 3.3.3 过氧化氢刺激对大鼠肝细胞中miR-383 表达的影响 | 第52-53页 |
| 3.3.4 抑制miR-383 的表达后,过氧化氢对凋亡相关指标的影响 | 第53-56页 |
| 3.3.5 抑制miR-383 的表达后,过氧化氢对氧化应激指标的影响 | 第56-58页 |
| 3.3.6 miR-383 靶基因的确定 | 第58-62页 |
| 4 讨论 | 第62-68页 |
| 4.1 急性冷暴露对大鼠肝脏组织氧化应激指标和凋亡蛋白的影响 | 第62-63页 |
| 4.2 急性冷暴露对大鼠肝脏组织中mi R-383 表达的影响 | 第63-64页 |
| 4.3 mi R-383 对氧化应激大鼠肝细胞的影响 | 第64-68页 |
| 5 结论 | 第68-70页 |
| 参考文献 | 第70-82页 |
| 致谢 | 第82-84页 |
| 个人简历 | 第84页 |
