| 摘要 | 第1-8页 |
| Abstract | 第8-10页 |
| 第1章 文献综述 | 第10-24页 |
| ·背景概况 | 第10页 |
| ·景天概况 | 第10-12页 |
| ·红景天分布概况 | 第10-11页 |
| ·红景天的化学成分 | 第11页 |
| ·红景天药用价值 | 第11-12页 |
| ·红景天苷生物合成研究进展 | 第12-13页 |
| ·红景天苷生物合成途径 | 第12-13页 |
| ·红景天苷生物合成途径中部分关键酶基因 | 第13-19页 |
| ·酪氨酸脱羧酶(TyDC) | 第13-14页 |
| ·苯丙氨酸解氨酶(PAL) | 第14-16页 |
| ·肉桂酸-4-羟基化酶(C4H) | 第16页 |
| ·UDP-葡萄糖基转移酶(UDPGT) | 第16-19页 |
| ·红景天的生物学研究进展 | 第19-21页 |
| ·人工栽培 | 第19-20页 |
| ·组织培养与快速繁殖 | 第20页 |
| ·景天的细胞培养 | 第20-21页 |
| ·景天的发根培养 | 第21页 |
| ·不同诱导子对植物的影响 | 第21-24页 |
| 第2章 绪论 | 第24-26页 |
| ·研究目的和意义 | 第24页 |
| ·研究范围和内容 | 第24-25页 |
| ·技术路线 | 第25-26页 |
| 第3章 材料与方法 | 第26-42页 |
| ·植物材料 | 第26页 |
| ·菌株和质粒 | 第26页 |
| ·仪器和设备 | 第26页 |
| ·试剂盒及试剂 | 第26页 |
| ·自配试剂 | 第26-28页 |
| ·常规方法介绍 | 第28-30页 |
| ·RNA的提取 | 第28页 |
| ·DNA产物的琼脂糖凝胶电泳 | 第28页 |
| ·目的条带的回收 | 第28-29页 |
| ·目的片段与克隆载体T连接 | 第29页 |
| ·大肠杆菌DH5α感受态细胞的制备(CaCl_2法) | 第29页 |
| ·连接反应物转化大肠杆菌感受态细胞 | 第29-30页 |
| ·RcUDPGT基因cDNA的克隆与分析 | 第30-37页 |
| ·从大花红景天总RNA合成第一链cDNA | 第30-31页 |
| ·目的基因的克隆 | 第31-35页 |
| ·RcUDPGT基因的生物信息学分析 | 第35页 |
| ·大花红景天UDPGT基因组DNA及启动子序列的克隆 | 第35-37页 |
| ·大花红景天发根培养体系的建立 | 第37-42页 |
| ·根癌农杆菌C58C1(pRiA4)的活化 | 第37页 |
| ·根癌农杆菌C58C1(pRiA4)转化大花红景天外植体 | 第37页 |
| ·大花红景天发根的PCR鉴定 | 第37-39页 |
| ·基因表达量的检查 | 第39-40页 |
| ·大花红景天发根中红景天苷含量的检测 | 第40-42页 |
| 第4章 结果与分析 | 第42-66页 |
| ·RcUDPGT基因cDNA的获得和分析 | 第42-48页 |
| ·RcUDPGT基因的获得 | 第42-43页 |
| ·RcUDPGT基因的生物信息学分析 | 第43页 |
| ·RcUDPGT与其他物种的UDP-葡萄糖基转移酶氨基酸序列的多重比对 | 第43-44页 |
| ·RcUDPGT分子进化树的构建 | 第44-45页 |
| ·RcUDPGT蛋白的保守结构域分析 | 第45-46页 |
| ·RcUDPGT蛋白亲/疏水性预测 | 第46-47页 |
| ·RcUDPGT蛋白二级结构预测 | 第47页 |
| ·RcUDPGT蛋白三位级结构预测 | 第47-48页 |
| ·RcUDPGT基因DNA和启动子的获得和分析 | 第48-53页 |
| ·RcUDPGT基因组DNA的获得 | 第48-50页 |
| ·RcUDPGT基因启动子分析 | 第50-51页 |
| ·重要顺式作用元件的分析预测 | 第51-53页 |
| ·大花红景天发根对不同诱导子处理的响应 | 第53-61页 |
| ·大花红景天发根的诱导 | 第53-56页 |
| ·大花红景天发根的悬浮培养 | 第56-57页 |
| ·荧光定量PCR及HPLC检测标准的建立 | 第57页 |
| ·大花红景天发根对不同诱导子的响应 | 第57-60页 |
| ·红景天苷合成相关基因组织表达谱与红景天苷组织含量谱的建立 | 第60-61页 |
| ·结论与展望 | 第61-66页 |
| 参考文献 | 第66-76页 |
| 附录 | 第76-78页 |
| 缩略词表 | 第76-78页 |
| 硕士期间发表论文 | 第78页 |
| 参加课题 | 第78-80页 |
| 致谢 | 第80页 |
