| 致谢 | 第1-4页 |
| 目录 | 第4-7页 |
| 缩写与简称 | 第7-8页 |
| 中文摘要 | 第8-10页 |
| 英文摘要 | 第10-13页 |
| 第1章 前言 | 第13-29页 |
| 1．1 增强UV-B对植物的生物学效应 | 第13-16页 |
| 1．1．1 对生长发育的影响 | 第13-14页 |
| 1．1．2 对细胞遗传学效应的影响 | 第14页 |
| 1．1．3 对生理生化特性的影响 | 第14-16页 |
| 1．2 激光对植物的生物学效应 | 第16-19页 |
| 1．2．1 激光的种类及作用机制 | 第16-17页 |
| 1．2．2 激光辐照对植物生长发育的影响 | 第17-18页 |
| 1．2．3 激光的细胞遗传学效应 | 第18页 |
| 1．2．4 激光对植物的生理生化代谢活动的影响 | 第18页 |
| 1．2．5 激光对DNA的作用 | 第18-19页 |
| 1．3 植物对环境胁迫的保护及适应 | 第19-22页 |
| 1．3．1 植物的光抑制及机理 | 第19页 |
| 1．3．2 植物强光破坏的保护机制 | 第19-20页 |
| 1．3．3 植物细胞的光受体与光信号转导 | 第20-21页 |
| 1．3．4 植物对UV-B的适应与保护 | 第21-22页 |
| 1．4 植物DNA对UV-B损伤的修复 | 第22-27页 |
| 1．4．1 损伤的种类及机理 | 第22-23页 |
| 1．4．2 损伤修复的途径及机制 | 第23-26页 |
| 1．4．3 关于切除修复与转录偶联 | 第26-27页 |
| 1．4．4 关于修复与信号传递 | 第27页 |
| 1．4．5 关于激光对UV损伤修复的研究 | 第27页 |
| 1．5 本文研究的目的及主要内容 | 第27-29页 |
| 第2章 材料与方法 | 第29-37页 |
| 2．1 材料 | 第29页 |
| 2．2 方法 | 第29-37页 |
| 2．2．1 材料处理设置 | 第29页 |
| 2．2．2 种子的萌发 | 第29页 |
| 2．2．3 增强UV-B辐射处理 | 第29-30页 |
| 2．2．4 He-Ne激光辐照处理 | 第30页 |
| 2．2．5 红光辐照处理 | 第30页 |
| 2．2．6 萌发率的统计 | 第30页 |
| 2．2．7 染色体切片的制作 | 第30-31页 |
| 2．2．8 扫描电镜样品的制作与观察 | 第31页 |
| 2．2．9 丙二醛（MDA）含量的测定 | 第31页 |
| 2．2．10 抗坏血酸（AsA）含量的测定 | 第31-32页 |
| 2．2．11 谷胱甘肽（GSH）含量的测定 | 第32页 |
| 2．2．12 紫外吸收物含量 | 第32页 |
| 2．2．13 可溶性蛋白含量的测定 | 第32页 |
| 2．2．14 过氧化氢酶（CAT）活性的测定 | 第32-33页 |
| 2．2．15 过氧化物酶（POD）活性的测定 | 第33页 |
| 2．2．16 超氧化物歧化酶（SOD）活性测定 | 第33页 |
| 2．2．17 淀粉酶活性的测定 | 第33页 |
| 2．2．18 苯丙氨酸解氨酶（PAL）的活性测定 | 第33-34页 |
| 2．2．19 总RNA的提取与含量测定 | 第34页 |
| 2．2．20 胸腺嘧啶二聚体（CPD）的测定 | 第34-35页 |
| 2．2．21 同位素标记与非按期DNA合成的测定 | 第35-36页 |
| 2．2．22 荧光光谱法测定dsDNA含量 | 第36页 |
| 2．2．23 数据处理 | 第36-37页 |
| 第3章 结果 | 第37-55页 |
| 3．1 小麦UV-B辐射的剂量选择 | 第37页 |
| 3．2 He-Ne激光辐照剂量的选择 | 第37-39页 |
| 3．2．1 激光电流强度（mA）与激光输出功率（mW）间的关系 | 第37-38页 |
| 3．2．2 He-Ne激光辐照处理对小麦萌发率的影响 | 第38页 |
| 3．2．3 He-Ne激光辐照对小麦RNA及可溶性蛋白合成的影响 | 第38-39页 |
| 3．3 He-Ne激光和增强UV-B辐射对小麦萌发期的影响 | 第39-41页 |
| 3．3．1 不同处理对萌发期小麦生长发育的影响 | 第39-40页 |
| 3．3．2 不同处理对小麦萌发力的影响 | 第40-41页 |
| 3．4 小麦He-Ne激光和增强UV-B辐射的细胞生物学效应 | 第41-43页 |
| 3．4．1 小麦体细胞增强UV-B辐射下的异常分裂—分束分裂 | 第41-43页 |
| 3．4．2 He-Ne激光和增强UV-B辐射对小麦叶表面结构的影响 | 第43页 |
| 3．5 He-Ne激光和增强UV-B辐射对小麦生理、生化代谢的影响 | 第43-48页 |
| 3．5．1 He-Ne激光和增强UV-B辐射对小麦MDA的影响 | 第43页 |
| 3．5．2 He-Ne激光和增强UV-B辐射对小麦抗氧化系统（酶类）的影响 | 第43-45页 |
| 3．5．3 He-Ne激光和增强UV-B辐射对小麦抗氧化系统（非酶类）的影响 | 第45-46页 |
| 3．5．4 He-Ne激光与增强UV-B辐射对小麦紫外吸收物含量的影响 | 第46页 |
| 3．5．5 He-Ne激光与增强UV-B辐射对小麦淀粉酶活性的影响 | 第46-47页 |
| 3．5．6 He-Ne激光与增强UV-B辐射对小麦RNA合成活性的影响 | 第47-48页 |
| 3．5．7 He-Ne激光与增强UV-B辐射对小麦可溶性蛋白合成的影响 | 第48页 |
| 3．6 He-Ne激光对小麦DNA增强UV-B辐射损伤的修复及机制 | 第48-55页 |
| 3．6．1 对DNA损伤与修复水平的测定 | 第48-50页 |
| 3．6．2 He-Ne激光和增强UV-B辐射对小麦DNA修复合成的影响 | 第50-52页 |
| 3．6．3 对DNA损伤切除的影响 | 第52-55页 |
| 第4章 讨论 | 第55-63页 |
| 4．1 增强UV-B辐射下小麦的“多效应”现象 | 第55-61页 |
| 4．1．1 形态与生长发育效应 | 第55-56页 |
| 4．1．2 细胞水平效应 | 第56-58页 |
| 4．1．3 生理生化水平效应 | 第58页 |
| 4．1．4 DNA水平的效应 | 第58-61页 |
| 4．2 激光的作用机制 | 第61页 |
| 4．3 有关增强UV-B辐射研究的进展与方向 | 第61-63页 |
| 第5章 结论 | 第63-64页 |
| 参考文献 | 第64-78页 |
| 图版 | 第78-81页 |
| 附录： 博士在读期间发表的科技论文 | 第81页 |
