| 摘要 | 第1-5页 |
| ABSTRACT | 第5-20页 |
| 第一章 绪论 | 第20-42页 |
| ·鹰嘴豆简介 | 第20页 |
| ·鹰嘴豆生物活性物质的研究概述 | 第20-22页 |
| ·鹰嘴豆蛋白质 | 第20-21页 |
| ·鹰嘴豆活性肽 | 第21-22页 |
| ·抑制血管紧缩素(ACE)活性肽 | 第21页 |
| ·鹰嘴豆抑真菌肽及抗HIV-1 反转录酶肽 | 第21页 |
| ·鹰嘴豆免疫肽和抗过敏肽 | 第21-22页 |
| ·鹰嘴豆黄酮类物质 | 第22页 |
| ·抗氧化肽的研究进展 | 第22-25页 |
| ·抗氧化肽的来源及抗氧化活性 | 第22-25页 |
| ·天然抗氧化肽 | 第22-23页 |
| ·蛋白水解抗氧化肽 | 第23-25页 |
| ·抗氧化能力的测定方法 | 第25-29页 |
| ·抑制脂类物质氧化能力的测定 | 第25-26页 |
| ·食用油脂或富含油脂的食物检测底物 | 第26页 |
| ·亚油酸及甲基亚油酸作为被氧化基质 | 第26页 |
| ·低密度脂蛋白(LDL)和极低密度脂蛋白(HLDL)作被氧化的底物 | 第26页 |
| ·测定抗氧化剂清除自由基能力的方法 | 第26-29页 |
| ·羟自由基(OH·)捕获能力的测定方法 | 第27页 |
| ·超氧阴离子自由基(02·-)捕获能力的测定 | 第27-28页 |
| ·DPPH 自由基捕获能力的测定方法 | 第28页 |
| ·DMPD 自由基捕获能力的测定 | 第28页 |
| ·ORAC 法 | 第28-29页 |
| ·TRAP 法 | 第29页 |
| ·螯合金属离子的测定方法 | 第29页 |
| ·体内抗氧化酶活及脂质过氧化物的测定 | 第29页 |
| ·抗氧化肽的分离纯化与结构鉴定 | 第29-32页 |
| ·抗氧化肽的分离纯化 | 第29-31页 |
| ·离子交换色谱(ion exchange chromatography, IEC) | 第29-30页 |
| ·凝胶色谱法(gel chromatcgraphy, GC) | 第30页 |
| ·反相高效液相色谱(RP-HPLC) | 第30页 |
| ·亲和层析(Affinity chromatography, AC) | 第30页 |
| ·电泳法 | 第30页 |
| ·毛细管区带电泳(Capiliary zone electrophoresis, CZE) | 第30-31页 |
| ·毛细管等电聚焦电泳(Capillary osoelectricfocusing, CIEF) | 第31页 |
| ·毛细管凝胶电泳(capillary gel electrophoresis,CCE) | 第31页 |
| ·抗氧化肽的结构鉴定 | 第31-32页 |
| ·本课题的立题依据和意义 | 第32-33页 |
| ·本课题的研究内容 | 第33-34页 |
| 参考文献 | 第34-42页 |
| 第二章 鹰嘴豆蛋白酶解工艺的研究 | 第42-60页 |
| ·前言 | 第42页 |
| ·材料与仪器 | 第42-43页 |
| ·材料 | 第42页 |
| ·主要仪器 | 第42-43页 |
| ·实验方法 | 第43-47页 |
| ·鹰嘴豆蛋白提取工艺 | 第43页 |
| ·总氮测定 | 第43页 |
| ·多糖含量的测定 | 第43页 |
| ·总酚含量的测定 | 第43页 |
| ·氨基酸组成的测定 | 第43-44页 |
| ·蛋白酶酶活测定 | 第44-45页 |
| ·标准曲线的绘制 | 第44页 |
| ·蛋白酶测定 | 第44-45页 |
| ·鹰嘴豆蛋白酶解工艺 | 第45-46页 |
| ·鹰嘴豆蛋白酶解用酶的筛选实验 | 第46页 |
| ·碱性蛋白酶Alcalase 酶解鹰嘴豆蛋白的单因素试验 | 第46页 |
| ·最佳酶解条件的优化 | 第46页 |
| ·不同水解度鹰嘴豆蛋白酶解物还原能力的测定 | 第46页 |
| ·鹰嘴豆蛋白酶解物捕获超氧阴离子自由基的测定 | 第46-47页 |
| ·结果与分析 | 第47-58页 |
| ·原料鹰嘴豆蛋白的成分分析 | 第47页 |
| ·鹰嘴豆蛋白的氨基酸组成 | 第47-48页 |
| ·蛋白酶的筛选 | 第48-50页 |
| ·不同蛋白酶对鹰嘴豆蛋白水解度(DH)的影响 | 第48-49页 |
| ·不同酶对鹰嘴豆蛋白抗氧化性的影响 | 第49-50页 |
| ·Alcalase 蛋白酶水解鹰嘴豆蛋白的单因素试验 | 第50-52页 |
| ·温度对水解度的影响 | 第50页 |
| ·pH 值对水解度的影响 | 第50-51页 |
| ·底物浓度对水解度影响 | 第51页 |
| ·加酶量与底物浓度比(E | 第51-52页 |
| ·酶解条件的优化 | 第52-58页 |
| ·Alcalase 水解鹰嘴豆蛋白工艺的试验分析与回归方程的建立 | 第52-57页 |
| ·验证实验 | 第57-58页 |
| ·本章小结 | 第58页 |
| 参考文献 | 第58-60页 |
| 第三章 鹰嘴豆蛋白酶解物体外抗氧化活性的研究 | 第60-76页 |
| ·前言 | 第60页 |
| ·材料与仪器 | 第60-61页 |
| ·材料 | 第60-61页 |
| ·主要仪器 | 第61页 |
| ·试验方法 | 第61-63页 |
| ·不同水解度鹰嘴豆蛋白酶解物还原能力的测定 | 第61页 |
| ·不同水解度鹰嘴豆蛋白酶解物对DPPH 自由基的捕获能力的测定 | 第61-62页 |
| ·不同水解度鹰嘴豆蛋白酶解物的超氧阴离子自由基捕获能力的测定 | 第62页 |
| ·不同水解度鹰嘴豆蛋白酶解物的羟自由基(·OH)捕获能力的测定—采用邻氮二菲法比色法 | 第62页 |
| ·不同水解度鹰嘴豆蛋白酶解物螯合金属离子能力的测定 | 第62-63页 |
| ·鹰嘴豆蛋白酶解物抗脂质过氧化能力 | 第63页 |
| ·结果与讨论 | 第63-72页 |
| ·不同水解度鹰嘴豆蛋白酶解物还原能力的测定 | 第63-64页 |
| ·不同水解度鹰嘴豆蛋白酶解物对 DPPH 自由基的捕获能力 | 第64-65页 |
| ·不同水解度鹰嘴豆蛋白酶解物的超氧阴离子自由基捕获能力 | 第65-66页 |
| ·不同水解度鹰嘴豆蛋白酶解物的羟自由基(·OH)捕获能力 | 第66-67页 |
| ·不同水解度鹰嘴豆蛋白酶解物对金属离子的螯合作用 | 第67-68页 |
| ·不同水解度鹰嘴豆蛋白酶解物对亚油酸自氧化的抑制能力 | 第68-69页 |
| ·不同水解度鹰嘴豆蛋白酶解物的相对分子量分布 | 第69-71页 |
| ·鹰嘴豆蛋白酶解物体外抗氧化性的讨论 | 第71-72页 |
| ·本章小结 | 第72-73页 |
| 参考文献 | 第73-76页 |
| 第四章 鹰嘴豆蛋白酶解物体内抗氧化活性 | 第76-86页 |
| ·前言 | 第76-77页 |
| ·材料与仪器 | 第77页 |
| ·材料 | 第77页 |
| ·仪器 | 第77页 |
| ·方法 | 第77-79页 |
| ·动物分组 | 第77页 |
| ·组织样品的制备及蛋白质含量的测定 | 第77-78页 |
| ·血清、肝脏和心脏匀浆SOD 活性测定 | 第78页 |
| ·血清、肝脏和心脏匀浆中GSH-Px 的测定 | 第78页 |
| ·血清、肝脏和心脏匀浆中丙二醛(MDA)含量的测定 | 第78-79页 |
| ·统计学分析 | 第79页 |
| ·结果与讨论 | 第79-83页 |
| ·鹰嘴豆蛋白酶解物灌胃实验小鼠的体重变化 | 第79页 |
| ·鹰嘴豆蛋白酶解物对小鼠血清抗氧化功能的影响 | 第79-80页 |
| ·鹰嘴豆蛋白酶解物对小鼠肝脏组织抗氧化功能的影响 | 第80页 |
| ·鹰嘴豆蛋白酶解物对小鼠心脏组织抗氧化功能的影响 | 第80-81页 |
| ·鹰嘴豆蛋白酶解物体内抗氧化活性的讨论 | 第81-83页 |
| ·本章小结 | 第83页 |
| 参考文献 | 第83-86页 |
| 第五章 鹰嘴豆蛋白酶解物抗氧化活性肽的分离纯化及鉴定 | 第86-102页 |
| ·前言 | 第86页 |
| ·材料与仪器 | 第86-87页 |
| ·材料 | 第86页 |
| ·主要仪器设备 | 第86-87页 |
| ·试验方法 | 第87-88页 |
| ·样品制备 | 第87页 |
| ·凝胶色谱分离抗氧化肽 | 第87页 |
| ·半制备RP-HPLC 分离抗氧化肽 | 第87页 |
| ·RP-HPLC 分析抗氧化肽 | 第87页 |
| ·抗氧化肽氨基酸组成分析 | 第87页 |
| ·鹰嘴豆蛋白酶解物相对分子量分布的测定 | 第87-88页 |
| ·MALDI-TOF-TOF MS 质谱分析 | 第88页 |
| ·抗氧化活性的测定 | 第88页 |
| ·鹰嘴豆蛋白酶解物抗脂质过氧化能力 | 第88页 |
| ·鹰嘴豆蛋白酶解物对 DPPH 自由基的捕获能力的测定 | 第88页 |
| ·鹰嘴豆蛋白酶解物清除超氧阴离子自由基的测定 | 第88页 |
| ·鹰嘴豆蛋白酶解物的羟自由基(·OH)捕获能力的测定 | 第88页 |
| ·结果与讨论 | 第88-99页 |
| ·凝胶过滤色谱分离鹰嘴豆蛋白酶解物 | 第88-93页 |
| ·凝胶过滤色谱分离条件的确定 | 第88-89页 |
| ·凝胶过滤色谱分离组分抗氧化活性的测定 | 第89-92页 |
| ·组分Fra.IV 的相对分子量组成分析 | 第92-93页 |
| ·半制备RP-HPLC 分离鹰嘴豆蛋白酶解物Fra.IV | 第93-94页 |
| ·鹰嘴豆蛋白酶解抗氧化肽的结构鉴定 | 第94-97页 |
| ·鹰嘴豆蛋白酶解抗氧化肽的纯度的鉴定 | 第94-95页 |
| ·鹰嘴豆蛋白酶解抗氧化肽的氨基酸组成分析 | 第95页 |
| ·鹰嘴豆蛋白酶解抗氧化肽的结构鉴定 | 第95-97页 |
| ·抗氧化活性肽的序列比对 | 第97页 |
| ·Fra.IV-7 抗氧化能力的测定 | 第97-99页 |
| ·本章小结 | 第99页 |
| 参考文献 | 第99-102页 |
| 第六章 超高压处理对鹰嘴豆酶解物抗氧化性影响的研究 | 第102-118页 |
| ·前言 | 第102页 |
| ·材料与设备 | 第102-103页 |
| ·主要材料 | 第102-103页 |
| ·主要设备 | 第103页 |
| ·实验方法 | 第103-105页 |
| ·酶解在超高压处理之后进行的实验方法 | 第103-104页 |
| ·鹰嘴豆分离蛋白溶液的配制 | 第103页 |
| ·鹰嘴豆分离蛋白溶液的超高压处理 | 第103页 |
| ·鹰嘴豆分离蛋白的酶解工艺 | 第103-104页 |
| ·水解度的测定 | 第104页 |
| ·鹰嘴豆蛋白的紫外扫描 | 第104页 |
| ·酶解在超高压处理过程中进行的实验方法 | 第104页 |
| ·鹰嘴豆分离蛋白溶液的配制 | 第104页 |
| ·鹰嘴豆分离蛋白溶液的超高压处理 | 第104页 |
| ·酶活力的测定 | 第104页 |
| ·鹰嘴豆酶解物的抗氧化活性的测定 | 第104页 |
| ·CPH 相对分子量分布的测定 | 第104-105页 |
| ·结果与讨论 | 第105-115页 |
| ·超高压预处理对CPI 紫外吸收光谱的影响 | 第105页 |
| ·超高压预处理对CPI 水解度的影响 | 第105-107页 |
| ·超高压预处理对CPH 抗氧化性的影响 | 第107-108页 |
| ·超高压下酶解对Alcalase 活力的影响 | 第108页 |
| ·超高压下酶解对CPI 水解度的影响 | 第108-110页 |
| ·超高压下酶解对CPH 抗氧化性的影响 | 第110页 |
| ·超高压下酶解对CPH 相对分子量分布的影响 | 第110-115页 |
| ·本章小结 | 第115-116页 |
| 参考文献 | 第116-118页 |
| 主要结论 | 第118-120页 |
| 展望 | 第120-121页 |
| 论文创新点 | 第121-122页 |
| 附录一:氨基酸序列为 ASN-ARG-TYR-HIS-GLU 的查新结果 | 第122-123页 |
| 在学期间发表的论文 | 第123-124页 |
| 致谢 | 第124页 |
