| 摘要 | 第1-4页 |
| 英文摘要 | 第4-5页 |
| 目录 | 第5-8页 |
| 引言 | 第8-10页 |
| 论文综述 | 第10-20页 |
| 1． 谷氨酰胺转胺酶简介 | 第10-14页 |
| 1．1 谷氨酰胺转胺酶的酶学特性 | 第10-13页 |
| 1．2 谷氨酰胺转胺酶的应用 | 第13页 |
| 1．3 微生物产谷氨酰胺转胺酶菌株的研究进展 | 第13-14页 |
| 2． 离子束生物工程简介 | 第14-18页 |
| 2．1 离子束生物工程概述 | 第14-15页 |
| 2．2 离子束生物工程的进展 | 第15-17页 |
| 2．3 离子束生物工程的展望 | 第17页 |
| 2．4 离子注入装置简介 | 第17-18页 |
| 3． 立题依据与意义 | 第18-20页 |
| 材料与方法 | 第20-26页 |
| 1． 实验材料 | 第20-21页 |
| 1．1 菌种来源 | 第20页 |
| 1．2 培养基 | 第20页 |
| 1．3 实验仪器 | 第20页 |
| 1．4 实验试剂 | 第20-21页 |
| 2． 实验方法 | 第21-26页 |
| 2．1 诱变方法 | 第21-22页 |
| 2．1．1 诱变流程 | 第21页 |
| 2．1．2 菌种活化 | 第21页 |
| 2．1．3 孢子悬浮液的制备 | 第21页 |
| 2．1．4 离子束诱变出发菌株的制备 | 第21页 |
| 2．1．5 离子束诱变 | 第21页 |
| 2．1．6 诱变后菌株孢子悬浮液的制备 | 第21页 |
| 2．1．7 不同浓度梯度菌株孢子的制备 | 第21页 |
| 2．1．8 单菌落挑选 | 第21-22页 |
| 2．1．9 存活率计算 | 第22页 |
| 2．2 初筛方法 | 第22页 |
| 2．2．1 酪蛋白絮凝性沉淀实验 | 第22页 |
| 2．2．2 初筛方法 | 第22页 |
| 2．3 复筛方法 | 第22-23页 |
| 2．3．1 绘制标准曲线 | 第22页 |
| 2．3．2 培养方式 | 第22页 |
| 2．3．3 酶活的测定 | 第22-23页 |
| 2．3．3．1 酶活测定试剂配方 | 第22页 |
| 2．3．3．2 酶活测定方法 | 第22-23页 |
| 2．4 遗传稳定性实验 | 第23页 |
| 2．5 培养基优化实验 | 第23-25页 |
| 2．5．1 正交实验因素表设计 | 第23-24页 |
| 2．5．2 正交实验表设计 | 第24-25页 |
| 2．6 碳源同化试验 | 第25-26页 |
| 2．6．1 十倍碳源同化母液的制作 | 第25页 |
| 2．6．2 同化结果的观察与记录 | 第25-26页 |
| 结果与分析 | 第26-39页 |
| 1． 不同剂量离子束注入 K21菌株后的结果与分析 | 第26-28页 |
| 2． 不同剂量离子束诱变后所得菌株的初筛检测结果与分析 | 第28-31页 |
| 2．1 不同剂量离子束诱变 K21菌株后所得菌株絮凝实验结果 | 第28-29页 |
| 2．2 相同取样范围内不同剂量离子束诱变 K21菌株后结果 | 第29-31页 |
| 3． 酪蛋白絮凝性沉淀实验 | 第31-33页 |
| 3．1 酪蛋白絮凝性沉淀实验对诱变后菌株效果 | 第31页 |
| 3．2 发酵48h与72h酪蛋白絮凝性沉淀实验分析 | 第31-33页 |
| 4． 标准曲线的绘制与酶活测定公式 | 第33页 |
| 5． 筛选流程与筛选结果 | 第33-34页 |
| 6． 遗传稳定性实验结果 | 第34-35页 |
| 7． 培养条件优化实验 | 第35-37页 |
| 7．1 正交实验结果 | 第35-36页 |
| 7．2 极差分析 | 第36-37页 |
| 8． S2菌株的碳源同化实验 | 第37-39页 |
| 讨论 | 第39-43页 |
| 1． 低能离子束诱变剂量的选择 | 第39页 |
| 2． 初筛方法的选择 | 第39-41页 |
| 3． 遗传稳定性实验 | 第41页 |
| 4． 培养条件优化实验 | 第41-43页 |
| 4．1． pH的影响 | 第41页 |
| 4．2 K_2HPO_4的影响 | 第41页 |
| 4．3 酵母膏的影响 | 第41页 |
| 4．4 温度的影响 | 第41-42页 |
| 4．5 MgSO_4的影响 | 第42页 |
| 4．6 蛋白胨、可溶性淀粉的影响 | 第42-43页 |
| 结论 | 第43-44页 |
| 参考文献 | 第44-50页 |
| 致谢 | 第50页 |
