摘要 | 第1-10页 |
Abstract | 第10-13页 |
第1章 绪论 | 第13-39页 |
1.1 样品预处理及萃取技术的发展历程 | 第13-18页 |
1.1.1 加速溶剂萃取 | 第14页 |
1.1.2 索氏提取和自动索氏提取 | 第14-15页 |
1.1.3 亚临界水相萃取 | 第15页 |
1.1.4 超临界流体萃取 | 第15-16页 |
1.1.5 固相萃取 | 第16-17页 |
1.1.6 固相微萃取 | 第17-18页 |
1.1.7 液膜萃取 | 第18页 |
1.2 超声助萃取 | 第18-21页 |
1.2.1 超声助提法在无机元素分析中的应用 | 第18-19页 |
1.2.2 超声助提有机化合物 | 第19-20页 |
1.2.3 超声助提法在天然产物中的应用 | 第20-21页 |
1.3 微波助萃取的发展历程及其应用 | 第21-26页 |
1.3.1 微波助萃取法的发展历程 | 第21-22页 |
1.3.2 微波助萃取在有机成分分析样品预处理中的应用 | 第22-26页 |
1.4 分子印迹技术的发展历程及其应用 | 第26-33页 |
1.4.1 分子印迹技术的简要发展历程 | 第26-27页 |
1.4.2 分子印迹技术的应用 | 第27-32页 |
1.4.3 分子印迹技术的前景和展望 | 第32-33页 |
1.5 杜仲研究进展及杜仲中绿原酸的分离分析 | 第33-38页 |
1.5.1 杜仲研究进展 | 第33-35页 |
1.5.2 杜仲中绿原酸的分离分析研究进展 | 第35-38页 |
1.6 本研究课题的提出 | 第38-39页 |
第一部分 超声波和超声助萃取 | 第39-52页 |
第2章 超声波作用原理及其在植物组织提取中的作用 | 第39-44页 |
2.1 超声波和空化作用 | 第39-40页 |
2.2 超声波在植物组织提取中的作用 | 第40-41页 |
2.3 超声助萃取的实验系统 | 第41-44页 |
2.3.1 不连续超声助萃取系统 | 第41-42页 |
2.3.2 连续超声助提系统 | 第42-44页 |
第3章 应用超声波技术从杜仲中提取绿原酸 | 第44-52页 |
3.1 引言 | 第44页 |
3.2 实验部分 | 第44-46页 |
3.2.1 实验设备 | 第44页 |
3.2.2 化学试剂和材料 | 第44-45页 |
3.2.3 实验方法 | 第45页 |
3.2.4 色谱分析 | 第45页 |
3.2.5 干燥植物材料中绿原酸的含量测定 | 第45页 |
3.2.6 测定回收率 | 第45页 |
3.2.7 超声波助提法的稳定性 | 第45-46页 |
3.3 结果和讨论 | 第46-51页 |
3.3.1 提取参数 | 第46-48页 |
3.3.2 绿原酸回收率和超声助提法的重复性 | 第48-49页 |
3.3.3 超声助提法测定杜仲及几种中药中的绿原酸含量 | 第49-50页 |
3.3.4 色谱分析 | 第50-51页 |
3.4 小结 | 第51-52页 |
第二部分 微波与微波技术在植物有效成分提取中的应用 | 第52-81页 |
第4章 微波化学的理论基础 | 第52-62页 |
4.1 微波及微波的吸收 | 第52-54页 |
4.2 物质在微波场中的热效应 | 第54-55页 |
4.3 液体在微波场中的行为 | 第55-62页 |
4.3.1 微波助萃取的基本原理 | 第55-62页 |
第5章 聚焦微波助提法提取杜仲叶中的有效成分及其HPLC检测 | 第62-73页 |
5.1 引言 | 第62-63页 |
5.2 实验部分 | 第63-65页 |
5.2.1 仪器 | 第63页 |
5.2.2 试剂和材料 | 第63页 |
5.2.3 微波助提过程 | 第63-64页 |
5.2.4 HPLC色谱分析 | 第64-65页 |
5.3 结果与讨论 | 第65-73页 |
5.3.1 考察提取参量 | 第65-68页 |
5.3.2 提取参量之间的相互作用 | 第68-70页 |
5.3.3 辐照时间和水中甲醇浓度的再优化 | 第70-71页 |
5.3.4 提取溶剂中醋酸用量对提取效率的影响 | 第71页 |
5.3.5 萃取剂和流动相的相融性 | 第71页 |
5.3.6 重现性实验 | 第71-73页 |
第6章 溶剂对微波助提杜仲中多酚酸类化合物的影响 | 第73-81页 |
6.1 引言 | 第73页 |
6.2 实验部分 | 第73-75页 |
6.2.1 仪器和设备 | 第73-74页 |
6.2.2 试剂和材料 | 第74页 |
6.2.3 杜仲样品的微波助提 | 第74-75页 |
6.2.4 HPLC分析 | 第75页 |
6.3 结果和讨论 | 第75-81页 |
6.3.1 预提取条件研究 | 第75-77页 |
6.3.2 不同类型溶剂对聚焦微波助提酚酸类化合物的影响 | 第77-78页 |
6.3.3 乙酸对酚酸类化合物微波助提取的促进作用 | 第78-79页 |
6.3.4 提取溶剂与流动相的相容性 | 第79页 |
6.3.5 重现性实验 | 第79-81页 |
第三部分 分子印迹技术及其应用 | 第81-119页 |
第7章 分子印迹和分子印迹聚合物的制备及识别机理 | 第81-87页 |
7.1 分子印迹的一般原理 | 第81-84页 |
7.2 分子印迹聚合物的制备方法 | 第84-85页 |
7.3 分子印迹聚合物的选择识别 | 第85-87页 |
第8章 原儿茶酸分子印迹聚合物的识别性能及其色谱行为研究 | 第87-97页 |
8.1 引言 | 第87页 |
8.2 实验部分 | 第87-90页 |
8.2.1 试剂和材料 | 第87-88页 |
8.2.2 仪器和设备 | 第88页 |
8.2.3 分子印迹聚合物的制备 | 第88-89页 |
8.2.4 平衡吸附实验和Scatchard分析 | 第89页 |
8.2.5 色谱行为测试 | 第89-90页 |
8.3 结果与讨论 | 第90-96页 |
8.3.1 聚合物的制备 | 第90页 |
8.3.2 分子印迹聚合物和非印迹聚合物对原儿茶酸和没食子酸的吸附行为 | 第90-91页 |
8.3.3 分子印迹聚合物的吸附机理 | 第91-93页 |
8.3.4 分析物在分子印迹聚合物上的保留行为 | 第93-96页 |
8.4 小结 | 第96-97页 |
第9章 前沿分析法研究咖啡酸分子印迹聚合物整块固定相的吸附等温线和位点分布 | 第97-107页 |
9.1 引言 | 第97页 |
9.2 理论部分 | 第97-99页 |
9.2.1 色谱方程 | 第97-98页 |
9.2.2 吸附等温线 | 第98页 |
9.2.3 等温平衡模型 | 第98-99页 |
9.3 实验部分 | 第99-101页 |
9.3.1 药品和试剂 | 第99页 |
9.3.2 制备咖啡酸印迹聚合物整体柱 | 第99页 |
9.3.3 仪器和设备 | 第99页 |
9.3.4 流动相和样品溶液 | 第99页 |
9.3.5 测定吸附等温线 | 第99-101页 |
9.4 结果和讨论 | 第101-106页 |
9.4.1 咖啡酸及其结构相似化合物在咖啡酸印迹聚合物柱上的吸附等温线 | 第101-102页 |
9.4.2 用含乙酸的四氢呋喃溶液作流动相,测定咖啡酸在分子印迹聚合物柱上的吸附等温线 | 第102-105页 |
9.4.3 不同温度下的吸附等温线 | 第105-106页 |
9.5 小结 | 第106-107页 |
第10章 分子印迹聚合物固定相在线分离和纯化绿原酸 | 第107-119页 |
10.1 引言 | 第107-108页 |
10.2 实验部分 | 第108-110页 |
10.2.1 化学试剂和材料 | 第108页 |
10.2.2 原位制备咖啡酸分子印迹聚合物固定相 | 第108-109页 |
10.2.3 仪器和设备 | 第109页 |
10.2.4 色谱评价分子印迹聚合物块的保留行为 | 第109页 |
10.2.5 吸附等温线的测定 | 第109页 |
10.2.6 MIP固定相分离绿原酸的过程与步骤 | 第109-110页 |
10.2.7 HPLC分析 | 第110页 |
10.3 结果和讨论 | 第110-118页 |
10.3.1 分子印迹聚合物块状固定相的制备 | 第110页 |
10.3.2 分子印迹聚合物块的选择性 | 第110-112页 |
10.3.3 分子印迹聚合物块的键合容量 | 第112-114页 |
10.3.4 在线分离绿原酸 | 第114-118页 |
10.4 小结 | 第118-119页 |
结论 | 第119-121页 |
参考文献 | 第121-156页 |
致谢 | 第156-157页 |
附录 (攻读博士学位期间所发表的学术论文目录) | 第157页 |