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法夫酵母虾青素发酵条件的优化及提取与分析研究

目录第1-11页
摘要第11-14页
Abstract第14-19页
第一章 文献综述第19-50页
 1 虾青素概述第19-25页
  1.1 虾青素简介第19页
  1.2 虾青素的化学结构第19-21页
   1.2.1 虾青素的基本结构第19页
   1.2.2 虾青素的立体异构体第19-21页
   1.2.3 虾青素的几何异构体第21页
   1.2.4 游离虾青素与酯化虾青素第21页
  1.3 虾青素的基本理化性质第21-22页
  1.4 虾青素的生理活性第22-23页
  1.5 虾青素的商业应用第23-25页
   1.5.1 在饲料中的应用第23-24页
   1.5.2 医药及保健品中的应用第24页
   1.5.3 其他方面的应用第24-25页
 2 虾青素的来源及生产技第25-29页
  2.1 虾青素的化学合成第25页
  2.2 从水产下脚料中提取虾青素第25-26页
  2.3 培养藻类生产虾青素第26页
  2.4 培养酵母生产虾青素第26页
  2.5 培养细菌生产虾青素第26-27页
  2.6 天然虾青素及人工合成虾青素的差异第27-28页
  2.7 不同方法生产虾青素的产业化前景比较第28-29页
 3 法夫酵母与虾青素第29-40页
  3.1 法夫酵母概述第29-30页
  3.2 类胡萝卜素在法夫酵母体内的细胞位置第30页
  3.3 法夫酵母生物合成虾青素的途径第30-31页
  3.4 法夫酵母生物合成虾青素的调节控制第31-34页
  3.5 高产菌种的选育第34-38页
   3.5.1 法夫酵母的突变育种第34-36页
   3.5.2 原生质体融合育种第36页
   3.5.3 基因工程育种第36-38页
  3.6 法夫酵母合成虾青素条件的研究第38-39页
  3.7 法夫酵母与虾青素的研究现状与对策第39-40页
 4 本论文的研究思路及意义第40-41页
 参考文献第41-50页
第二章 分光法测定法夫酵母类胡萝卜素含量的研究第50-64页
 1 引言第50-51页
 2 材料与方法第51页
  2.1 实验仪器第51页
  2.2 化学药品及试剂第51页
  2.3 标准溶液的配制第51页
  2.4 法夫酵母的培养及类胡萝卜素提取第51页
  2.5 比导数光谱值的计算第51页
 3 实验结果第51-60页
  3.1 法夫酵母类胡萝卜素的吸收光谱第51-53页
  3.2 分光法测定法夫酵母总类胡萝卜素试验第53-54页
   3.2.1 标准工作曲线第53页
   3.2.2 标准溶液的分析第53-54页
  3.3 比光谱导数法同时测定法夫酵母虾青素和β—胡萝卜素试验第54-60页
   3.3.1 波长对比光谱导数值的影响第54-55页
   3.3.2 求导间隔对虾青素和β-胡萝卜素比导数光谱值的影响第55-56页
   3.3.3 除数因子对比光谱导数值的影响第56-57页
   3.3.4 共存物对比导数光谱的影响第57-58页
   3.3.5 工作曲线第58-59页
   3.3.6 标准混合样品的分析第59-60页
 4 讨论与结论第60-62页
  4.1 法夫酵母类胡萝卜素的光谱特征第60页
  4.2 分光法测定法夫酵母类胡萝卜素总量方法的优化及应用评价第60页
  4.3 比光谱导数法测定法夫酵母中虾青素及β—胡萝卜素的方法建立及应用评价第60-62页
 参考文献第62-64页
第三章 法夫酵母类胡萝卜素薄层色谱及液相色谱分析方法的优化及应用研究第64-82页
 1 前言第64页
 2 材料与方法第64-67页
  2.1 菌种第64-65页
   2.1.1 实验仪器第64-65页
   2.1.2 实验药品第65页
   2.1.3 培养方法和发酵条件第65页
  2.2 实验方法第65-67页
   2.2.1 法夫酵母的培养与类胡萝卜素的提取第65页
   2.2.2 溶剂极性的计算第65页
   2.2.3 薄层分析流程第65-66页
   2.2.4 高效液相色谱仪的使用流程第66页
   2.2.5 分离度的计算第66页
   2.2.6 簿层色谱溶剂的优化第66页
   2.2.7 液相色谱溶剂组成及梯度优化方法第66-67页
   2.2.8 数据分析方法第67页
 3 实验结果第67-79页
  3.1 法夫酵母类胡萝卜素簿层分析试验第67-72页
   3.1.1 展开溶剂极性对法夫酵母类胡萝卜素薄层分析的影响第67页
   3.1.2 溶剂组成优化的混料实验第67-69页
   3.1.3 混料实验结果的验证及溶剂的进一步筛选第69页
   3.1.4 标准曲线的绘制第69-70页
   3.1.5 回收率及精密度实验第70-72页
  3.2 法夫酵母类胡萝卜素高效液相色谱分析试验第72-79页
   3.2.1 溶剂组成的优化第72-74页
   3.2.2 水相比例对法夫酵母类胡萝卜素分离的影响第74页
   3.2.3 溶剂梯度优化实验计第74-76页
   3.2.4 标准曲线的绘制第76-77页
   3.2.5 混合标准样品分析试验第77-79页
 4 讨论与结论第79-81页
  4.1 法夫酵母类胡萝卜素薄层分析方法的优化及应用价值第79-80页
  4.2 法夫酵母类胡萝卜素高效液相色谱分析方法的优化及应用价值第80-81页
 参考文献第81-82页
第四章 法夫酵母虾青素提取条件的优化第82-99页
 1 前言第82页
 2 材料和方法第82-84页
  2.1 实验材料第82-83页
   2.1.1 实验菌株第82页
   2.1.2 实验药品第82页
   2.1.3 实验仪器第82-83页
  2.2 实验方法第83-84页
   2.2.1 发酵及菌体获取方法第83页
   2.2.2 法夫酵母虾青素的提取流程第83页
   2.2.3 虾青素分析方法第83页
   2.2.4 细胞破壁方法第83页
   2.2.5 提取条件优化方法第83页
   2.2.6 数据分析方法第83-84页
 3 实验结果第84-95页
  3.1 不同破壁方法对法夫酵母虾青素提取效果的影响第84页
  3.2 二甲亚砜法提取法夫酵母虾青素条件的优化第84-89页
   3.2.1 不同溶剂对法夫酵母虾青素提取率的影响第84页
   3.2.2 析因实验第84-86页
   3.2.3 最速上升实验第86页
   3.2.4 中心组合(CCD)实验第86-88页
   3.2.5 验证实验第88-89页
  3.3 酸法破壁法夫酵母提取虾青素工艺优化的研究第89-95页
   3.3.1 不同酸破壁法夫酵母提取虾青素试验第89页
   3.3.2 浸提溶剂的选择实验第89-90页
   3.3.3 析因实验第90-91页
   3.3.4 最速上升实验第91-92页
   3.3.5 中心组合实验第92-94页
   3.3.6 验证实验第94-95页
 4 讨论与结论第95-98页
  4.1 破壁方法的选择第95页
  4.2 提取溶剂的选择第95-96页
  4.3 二甲亚砜破壁法夫酵母提取虾青素的工艺及应用价值第96-97页
  4.4 酸法破壁法夫酵母对提取虾青素的影响及破壁用酸的选择第97页
  4.5 酸法破壁法夫酵母提取虾青素的工艺及应用价值第97-98页
 参考文献第98-99页
第五章 法夫酵母人工诱变及突变株的分离第99-111页
 1 前言第99页
 2 材料和方法第99-101页
  2.1 材料与药品第99-100页
   2.1.1 出发菌株第99页
   2.1.2 实验药品第99页
   2.1.3 培养基第99页
   2.1.4 实验仪器第99-100页
  2.2 实验方法第100-101页
   2.2.1 培养方法第100页
   2.2.2 人工诱变第100页
   2.2.3 突变株的分离筛选与保种第100页
   2.2.4 突变株的培养与类胡萝卜素提取第100-101页
   2.2.5 素分析及类胡萝卜素突变株鉴定第101页
 3 实验结果第101-108页
  3.1 诱变时间对死亡率的影响第101页
  3.2 突变株色素的薄层色谱分析第101-103页
  3.3 突变株类胡萝卜素的液相色谱分析第103-105页
  3.4 法夫酵母高产菌株7B12的菌落培养特征第105页
  3.5 法夫酵母7B12虾青素累积模型的研究第105-108页
 4 讨论与结论第108-109页
  4.1 诱变时间的选择第108页
  4.2 突变株的初步筛选第108页
  4.3 突变株的复筛及色素的鉴定第108-109页
  4.4 法夫酵母高产菌株7B12虾青素合成的代谢特征及基本模型第109页
 参考文献第109-111页
第六章 法夫酵母7B12产虾青素培养基优化第111-129页
 1 前言第111页
 2 材料和方法第111-113页
  2.1 实验材料第111-112页
   2.1.1 菌种第111页
   2.1.2 培养基第111页
   2.1.3 实验试剂与药品第111-112页
   2.1.4 试验仪器第112页
  2.2 试验方法第112-113页
   2.2.1 种子培养方法第112页
   2.2.2 摇瓶培养方法第112页
   2.2.3 发酵罐培养方法第112页
   2.2.4 菌体的获取方法第112页
   2.2.5 生物量的测定第112-113页
   2.2.6 pH值的测定第113页
   2.2.7 残糖的测定第113页
   2.2.8 类胡萝卜素的提取第113页
   2.2.9 虾青素含量的测定第113页
   2.2.10 发酵参数据的计算第113页
 3 实验结果第113-123页
  3.1 金属离子对法夫酵母7B12产虾青素的影响第113-117页
   3.1.1 不同金属离子对法夫酵母产虾青素的影响第113-114页
   3.1.2 复合金属离子对法夫酵母产虾青素的影响第114-116页
   3.1.3 验证实验第116页
   3.1.4 优化金属子组合批式培养法夫酵母7B12的实验第116-117页
  3.2 不同碳源对法夫酵母7B12发酵的影响第117页
  3.3 碳源浓度对法夫酵母7B12发酵的影响第117-118页
  3.4 法夫酵母产虾青素氮源优化实验第118-123页
   3.4.1 不同氮源对法夫酵母7B12发酵的影响第118-119页
   3.4.2 氮源复合试验第119-121页
   3.4.3 复合氮源的进一步比较第121页
   3.4.4 优化氮源分批培养实验第121-122页
   3.4.5 氮源成分调整分批发酵实验第122-123页
 4 讨论与结论第123-127页
  4.1 金属离子对法夫酵母7B12培养的影响及产虾青素金属离子复合优化第123-124页
  4.2 法夫酵母7B12发酵的碳源第124页
  4.3 3碳源浓度对法夫酵母7B12培养的影响第124-125页
  4.4 法夫酵母7B12发酵的氮源第125-127页
 参考文献第127-129页
第七章 法夫酵母7B12培养条件的优化及补料发酵第129-141页
 1 前言第129页
 2 材料和方法第129-131页
  2.1 实验材料第129-130页
   2.1.1 菌种第129页
   2.1.2 培养基第129页
   2.1.3 试验仪器第129-130页
   2.1.4 实验药品第130页
  2.2 试验方法第130-131页
   2.2.1 种子培养方法第130页
   2.2.2 摇瓶培养方法第130页
   2.2.3 菌体的获取方法第130页
   2.2.4 生物量的测定第130页
   2.2.5 pH值的测定第130页
   2.2.6 残糖的测定第130页
   2.2.7 类胡萝卜素的提取第130-131页
   2.2.8 虾青素含量的测定第131页
   2.2.9 发酵参数据的计算第131页
 3 实验结果第131-138页
  3.1 温度对法夫酵母7B12培养影响实验第131页
  3.2 pH对培养法夫酵母7B12培养的实验第131-134页
  3.3 溶氧对法夫酵母7B12发酵影响试验第134-136页
  3.4 30L发酵罐分批补料培养法夫酵母7B12第136-137页
  3.5 200L发酵罐分批补料培养法夫酵母7B12第137-138页
 4 讨论与结论第138-139页
  4.1 温度对法夫酵母7B12培养的影响及发酵温度的选择第138-139页
  4.2 pH值对法夫酵母7B12培养的影响及发酵pH值的选择第139页
  4.3 溶氧对法夫酵母7B12培养的影响及发酵溶氧的选择第139页
  4.4 法夫酵母7B12补料分批培养及其发酵经济学第139页
 参考文献第139-141页
第八章 主要结论与建议第141-146页
 1 主要结论第141-145页
 2 后续研究建议第145-146页
致谢第146-148页
个人简介及攻读博士学位期间发表的论文第148页

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