| 中文摘要 | 第1-6页 |
| 英文摘要 | 第6-7页 |
| 1 前言 | 第7-18页 |
| 1．1 木豆种质资源研究综述 | 第7-11页 |
| 1．1．1 木豆种质资源概况 | 第7-9页 |
| 1．1．2 国内木豆种质资源研究概况 | 第9-11页 |
| 1．1．3 国外木豆种质资源研究概况 | 第11页 |
| 1．2 检测物种遗传多样性的技术方法的综述 | 第11-17页 |
| 1．2．1 形态学标记 | 第12-13页 |
| 1．2．2 细胞学标记 | 第13页 |
| 1．2．3 蛋白质标记 | 第13-14页 |
| 1．2．4 DNA分子标记 | 第14-17页 |
| 1．2．4．1 DNA分子标记综述 | 第14-16页 |
| 1．2．4．2 RAPD分子标记 | 第16-17页 |
| 1．2．4．2．1 RAPD技术的原理 | 第16页 |
| 1．2．4．2．2 RAPD技术的特点 | 第16-17页 |
| 1．2．4．2．3 RAPD技术的应用 | 第17页 |
| 1．3 本研究的目的和意义 | 第17-18页 |
| 2 实验材料 | 第18-19页 |
| 2．1 木豆种质材料 | 第18页 |
| 2．2 试剂 | 第18页 |
| 2．3 仪器 | 第18-19页 |
| 3 实验方法 | 第19-24页 |
| 3．1 实验设计及田间管理 | 第19页 |
| 3．2 生理生化指标分析方法 | 第19页 |
| 3．3 农艺性状调查 | 第19页 |
| 3．4 木豆成分分析 | 第19-20页 |
| 3．5 形态性状数据分析 | 第20页 |
| 3．6 垂直平板聚丙烯酰胺凝胶电泳的过氧化物酶同工酶分析 | 第20页 |
| 3．7 RAPD技术 | 第20-24页 |
| 3．7．1 木豆总基因组DNA的提取（CTAB法） | 第20-21页 |
| 3．7．2 DNA样品浓度、纯度及质量的测定 | 第21-22页 |
| 3．7．3 RAPD反应体系的优化 | 第22页 |
| 3．7．4 RAPD的基本程序 | 第22-23页 |
| 3．7．5 RAPD数据统计与分析 | 第23-24页 |
| 4 结果与分析 | 第24-40页 |
| 4．1 不同木豆品种一些生理生化的比较 | 第24-29页 |
| 4．1．1 不同木豆品种的光合性能 | 第24-28页 |
| 4．1．2 叶片光合色素含量的差异 | 第28页 |
| 4．1．3 各木豆品种的束缚水、自由水含量的比较 | 第28-29页 |
| 4．1．4 不同木豆品种丙二醛含量的比较 | 第29页 |
| 4．2 各个品种主要性状比较分析 | 第29-30页 |
| 4．3 不同木豆品种的营养特性比较分析 | 第30-33页 |
| 4．4 基于形态性状的品种聚类分析 | 第33-34页 |
| 4．5 不同木豆品种的过氧化物酶同工酶谱带的分析 | 第34-35页 |
| 4．6 RAPD分析 | 第35-40页 |
| 4．6．1 木豆叶片总DNA的提取 | 第35页 |
| 4．6．2 RAPD反应体系 | 第35-38页 |
| 4．6．3 RAPD图谱分析 | 第38-40页 |
| 5 讨论 | 第40-45页 |
| 5．1 木豆品种生理生化及形态特征的综合评价 | 第40-42页 |
| 5．2 RAPD分析 | 第42-43页 |
| 5．2．1 适于RAPD分析的木豆树叶片总DNA的提取 | 第42-43页 |
| 5．2．2 RAPD反应条件的优化 | 第43页 |
| 5．3 形态标记、同工酶标记和RAPD分子标记的结果分析和比较 | 第43-45页 |
| 参考文献 | 第45-51页 |
| 致谢 | 第51-50页 |
