| 致谢 | 第1-6页 |
| 摘要 | 第6-9页 |
| Abstract | 第9-11页 |
| 目录 | 第11-13页 |
| 英文缩写语表 | 第13-14页 |
| 1 文献综述 | 第14-38页 |
| ·β2-肾上腺素受体激动剂概述 | 第14-17页 |
| ·β2-肾上腺素受体激动剂基本结构与分类 | 第14-17页 |
| ·沙丁胺醇理化性质 | 第17页 |
| ·β2-肾上腺素受体激动剂的作用机理 | 第17-21页 |
| ·β2-肾上腺素受体激动剂与动物促生长作用 | 第18-19页 |
| ·β2-肾上腺素受体激动剂对脂肪组织的作用 | 第19-21页 |
| ·β2-肾上腺素受体激动剂对激素的调节作用 | 第21页 |
| ·β2-肾上腺素受体激动剂对蛋白质的调节作用 | 第21页 |
| ·β2-肾上腺素受体激动剂在机体内的吸收、代谢及残留分布 | 第21-23页 |
| ·β2-肾上腺素受体激动剂在机体内的吸收 | 第21-22页 |
| ·β2-肾上腺素受体激动剂在机体内的代谢 | 第22页 |
| ·β2-肾上腺素受体激动剂在机体内的残留分布 | 第22-23页 |
| ·β2-兴奋剂残留对机体的毒性作用 | 第23-25页 |
| ·β2-兴奋剂的急慢性毒性 | 第23页 |
| ·近几年国内外β2-兴奋剂的中毒事件 | 第23-25页 |
| ·沙丁胺醇检测的国内外标准 | 第25-26页 |
| ·沙丁胺醇检测技术的研究进展 | 第26-36页 |
| ·理化检测法 | 第26-29页 |
| ·免疫分析法 | 第29-34页 |
| ·受体分析法 | 第34-35页 |
| ·检测方法小结 | 第35-36页 |
| ·本研究的意义和目的 | 第36-38页 |
| 2 材料与方法 | 第38-58页 |
| ·试验材料 | 第38-41页 |
| ·主要试剂 | 第38-40页 |
| ·主要设备 | 第40-41页 |
| ·试验动物 | 第41页 |
| ·其他材料 | 第41页 |
| ·试验方法 | 第41-58页 |
| ·沙丁胺醇人工抗原的合成与鉴定 | 第41-44页 |
| ·免疫兔子获得多抗血清 | 第44-45页 |
| ·兔单克隆抗体的制备 | 第45-49页 |
| ·沙丁胺醇ELISA检测方法的初步建立 | 第49-55页 |
| ·沙丁胺醇ELISA检测试剂盒的组装与样品的检测 | 第55-58页 |
| 3 试验结果与分析 | 第58-82页 |
| ·沙丁胺醇人工抗原的合成与鉴定 | 第58-60页 |
| ·沙丁胺醇免疫抗原的鉴定 | 第58-59页 |
| ·考马斯亮蓝法测定沙丁胺醇免疫抗原浓度 | 第59-60页 |
| ·兔单克隆抗体的制备 | 第60-65页 |
| ·杂交瘤细胞的筛选与克隆 | 第60-63页 |
| ·采用重组抗体技术生产沙丁胺醇单克隆抗体 | 第63-65页 |
| ·沙丁胺醇ELISA检测方法的初步建立 | 第65-77页 |
| ·包被条件的确定 | 第65-67页 |
| ·封闭条件的优化 | 第67-69页 |
| ·一抗作用时间的确定 | 第69页 |
| ·酶标二抗作用时间的确定 | 第69-70页 |
| ·底物条件的选择 | 第70-74页 |
| ·沙丁胺醇兔单克隆抗体效价的测定 | 第74页 |
| ·沙丁胺醇兔单克隆抗体亲和性的测定 | 第74-75页 |
| ·沙丁胺醇兔单克隆抗体特异性的测定 | 第75-77页 |
| ·沙丁胺醇ELISA检测试剂盒的组装与样品的检测 | 第77-82页 |
| ·沙丁胺醇ELISA检测试剂盒的组装 | 第77-78页 |
| ·尿样的处理与检测 | 第78-80页 |
| ·猪肉样品的处理与检测 | 第80-81页 |
| ·试剂盒准确性试验 | 第81-82页 |
| 4 结论与展望 | 第82-85页 |
| ·本实验得到的主要结论 | 第82-84页 |
| ·本研究的创新点 | 第84页 |
| ·后续进一步研究的问题与展望 | 第84-85页 |
| 参考文献 | 第85-94页 |
| 作者简介 | 第94页 |