| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-13页 |
| 第1章 引言 | 第13-42页 |
| ·交感神经系统(The sympathetic nervous system, SNS) | 第13-26页 |
| ·SNS 概述 | 第13-14页 |
| ·SNS 的主要生理功能 | 第14-26页 |
| ·间充质干细胞(Mesenchymal stem cells, MSCs) | 第26-40页 |
| ·MSCs 概述 | 第26-31页 |
| ·MSCs 的成骨分化及其调控 | 第31-35页 |
| ·MSCs 的成脂分化及其调控 | 第35-40页 |
| ·本研究的目的与意义 | 第40-42页 |
| 第2章 实验材料与基本实验方法 | 第42-56页 |
| ·实验材料 | 第42-47页 |
| ·常用生化试剂 | 第42页 |
| ·受体相关试剂 | 第42页 |
| ·细胞培养及指标检测相关试剂 | 第42-43页 |
| ·PCR 及Western 杂交相关试剂 | 第43-44页 |
| ·缓冲液 | 第44-45页 |
| ·试剂盒及DNA 标准物 | 第45-47页 |
| ·仪器与设备 | 第47页 |
| ·常用实验操作方法 | 第47-56页 |
| ·小鼠MSCs 的分离与培养 | 第47-48页 |
| ·MTT 测定 | 第48页 |
| ·蛋白浓度测定 | 第48页 |
| ·ALP 活性测定 | 第48-49页 |
| ·茜素红S 染色 | 第49页 |
| ·钙含量测定 | 第49页 |
| ·油红O 染色 | 第49-50页 |
| ·RNA 提取 | 第50-51页 |
| ·反转录 | 第51-52页 |
| ·实时定量PCR (Quantitative real time PCR, qRT-PCR) | 第52页 |
| ·Western 杂交 | 第52-54页 |
| ·cAMP 浓度测定 | 第54-56页 |
| 第3章 小鼠MSCs 体外成骨、成脂分化体系的建立 | 第56-67页 |
| ·实验目的 | 第56页 |
| ·实验方法 | 第56-59页 |
| ·MSCs 的分离与培养 | 第56页 |
| ·成骨诱导 | 第56页 |
| ·成骨分化状态的检测 | 第56-58页 |
| ·成脂诱导 | 第58页 |
| ·成脂分化状态的检测 | 第58-59页 |
| ·数据统计 | 第59页 |
| ·实验结果 | 第59-65页 |
| ·MSCs 的形态学观察 | 第59-60页 |
| ·成骨分化的诱导效果 | 第60-62页 |
| ·成脂分化的诱导效果 | 第62-65页 |
| ·讨论 | 第65-67页 |
| 第4章 β-肾上腺素受体在小鼠MSCs 成骨分化中的作用 | 第67-85页 |
| ·实验目的 | 第67-68页 |
| ·材料与方法 | 第68-71页 |
| ·实验所用试剂 | 第68页 |
| ·小鼠MSCs 的分离、培养及成骨诱导 | 第68页 |
| ·MTT 检测 | 第68页 |
| ·β-ARs 在MSCs 成骨分化过程中的表达 | 第68-69页 |
| ·β-AR 激活剂ISO 对MSCs 成骨分化的作用 | 第69页 |
| ·β-AR 阻滞剂对激活剂的拮抗作用 | 第69-70页 |
| ·cAMP 测定 | 第70页 |
| ·Western 杂交检测各处理组BMP2 的表达情况 | 第70页 |
| ·数据分析 | 第70-71页 |
| ·结果 | 第71-81页 |
| ·β-AR 激活剂或阻滞剂对细胞生长的影响 | 第71页 |
| ·β-ARs 在MSCs 成骨分化过程中的表达 | 第71-73页 |
| ·β-AR 激活剂ISO 对MSCs 的成骨分化具剂量与时间依赖作用 | 第73-75页 |
| ·不同β-AR 阻滞剂对激活剂ISO 的拮抗作用 | 第75-80页 |
| ·β-AR 激活剂或阻滞剂对cAMP 浓度的影响 | 第80页 |
| ·不同激活剂或阻滞剂对BMP2 蛋白表达的影响 | 第80-81页 |
| ·讨论 | 第81-84页 |
| ·小结 | 第84-85页 |
| 第5章 β-肾上腺素受体在小鼠MSCs 成脂分化中的作用 | 第85-103页 |
| ·实验目的 | 第85-86页 |
| ·材料与方法 | 第86-88页 |
| ·实验所用试剂 | 第86页 |
| ·小鼠MSCs 的分离、培养及成脂诱导 | 第86页 |
| ·β-ARs 在MSCs 成脂分化过程中的表达 | 第86页 |
| ·β-AR 激活剂ISO 对MSCs 成脂分化的作用 | 第86-87页 |
| ·β-AR 阻滞剂对激活剂的拮抗作用 | 第87页 |
| ·cAMP 浓度测定 | 第87页 |
| ·Western 杂交检测各处理组PPARγ2 的表达情况 | 第87-88页 |
| ·数据分析 | 第88页 |
| ·结果 | 第88-98页 |
| ·β-ARs 在MSCs 成脂分化过程中的表达 | 第88-89页 |
| ·β-AR 激活剂ISO 对MSCs 成脂分化的作用 | 第89-93页 |
| ·不同β-AR 阻滞剂对激活剂ISO 的拮抗作用 | 第93-97页 |
| ·β-AR 激活剂或阻滞剂对cAMP 浓度的影响 | 第97页 |
| ·不同激活剂或阻滞剂对PPARγ2 蛋白表达的影响 | 第97-98页 |
| ·讨论 | 第98-102页 |
| ·小结 | 第102-103页 |
| 第6章 结论 | 第103-108页 |
| 参考文献 | 第108-132页 |
| 致谢 | 第132-133页 |
| 个人简历、在学期间发表的学术论文 | 第133-134页 |
