致谢 | 第4-5页 |
摘要 | 第5-7页 |
Abstract | 第7-8页 |
英文缩略词表(Abbreviation) | 第13-15页 |
文献综述 | 第15-24页 |
1 百合研究进展 | 第15-16页 |
1.1 百合资源现状 | 第15页 |
1.2 百合化学成分 | 第15-16页 |
1.3 百合的药理作用 | 第16页 |
2 植物多糖研究进展 | 第16-22页 |
2.1 植物多糖提取与纯化 | 第16-19页 |
2.1.1 原料预处理 | 第17页 |
2.1.2 提取 | 第17-18页 |
2.1.3 纯化 | 第18-19页 |
2.2 植物多糖结构鉴定 | 第19页 |
2.3 植物多糖药理作用及机理研究 | 第19-22页 |
2.3.1 增强免疫作用 | 第19-21页 |
2.3.2 抗肿瘤作用 | 第21页 |
2.3.3 降血糖作用 | 第21-22页 |
2.3.4 抗氧化和抗衰老作用 | 第22页 |
2.3.5 其他作用 | 第22页 |
3 百合多糖药理活性研究 | 第22-24页 |
引言 | 第24-25页 |
材料与方法 | 第25-38页 |
1 实验仪器和试剂 | 第25-27页 |
1.1 实验材料 | 第25页 |
1.2 实验主要仪器 | 第25页 |
1.3 主要实验试剂 | 第25-26页 |
1.4 实验试剂配制 | 第26-27页 |
2 实验方法 | 第27-38页 |
2.1 百合多糖提取工艺优化 | 第27-29页 |
2.1.1 多糖提取方法 | 第27页 |
2.1.2 多糖含量检测方法 | 第27-28页 |
2.1.3 单因素实验 | 第28-29页 |
2.1.4 响应面优化实验 | 第29页 |
2.2 百合多糖分离纯化 | 第29-31页 |
2.2.1 Sevag法除蛋白质 | 第29页 |
2.2.2 DEAE-52纤维素分离纯化 | 第29-30页 |
2.2.3 SephadexG-100纯化 | 第30-31页 |
2.3 百合多糖结构分析 | 第31-33页 |
2.3.1 总糖含量测定 | 第31页 |
2.3.2 糖醛酸含量测定 | 第31-32页 |
2.3.3 单糖组成测定 | 第32页 |
2.3.4 分子量测定 | 第32-33页 |
2.3.5 红外分析 | 第33页 |
2.4 百合多糖对巨噬细胞免疫活性的影响 | 第33-37页 |
2.4.1 细胞毒性检测 | 第33页 |
2.4.2 细胞吞噬活性检测 | 第33页 |
2.4.3 细胞培养液中NO和细胞因子含量检测 | 第33-34页 |
2.4.4 细胞因子mRNA表达量的检测 | 第34-36页 |
2.4.5 细胞TLR-4表达量和NF-κB通路相关磷酸化水平的检测 | 第36-37页 |
2.5 数据统计及分析 | 第37-38页 |
实验结果与分析 | 第38-59页 |
1 百合多糖提取工艺优化结果 | 第38-45页 |
1.1 百合多糖含量测定 | 第38-39页 |
1.2 单因素实验 | 第39-41页 |
1.3 相应面优化实验 | 第41-45页 |
1.3.1 响应面优化方案与结果 | 第41-45页 |
1.3.2 实验结果验证 | 第45页 |
2 百合多糖分离纯化结果 | 第45-47页 |
2.1 Sevag法除蛋白质效果 | 第45-46页 |
2.2 DEAE-52纤维素柱分离纯化结果 | 第46页 |
2.3 SephedexG-100凝胶柱纯化结果 | 第46-47页 |
3 百合多糖的结构鉴定 | 第47-52页 |
3.1 总糖含量 | 第47页 |
3.2 糖醛酸含量 | 第47-48页 |
3.3 单糖组成 | 第48-50页 |
3.4 平均分子量 | 第50-51页 |
3.5 红外分析 | 第51-52页 |
4 百合多糖的免疫活性研究 | 第52-59页 |
4.1 LLPS-1对RAW264.7细胞活性的影响 | 第52页 |
4.2 LLPS-1对RAW264.7细胞吞噬活性的影响 | 第52-53页 |
4.3 LLPS-1对RAW264.7细胞分泌NO的影响 | 第53-54页 |
4.4 LLPS-1对RAW264.7细胞的细胞因子分泌的影响 | 第54-55页 |
4.5 LLPS-1对RAW264.7细胞的细胞因子mRNA表达的影响 | 第55-56页 |
4.6 LLPS-1对RAW264.7细胞蛋白表达的影响 | 第56-59页 |
讨论 | 第59-61页 |
结论 | 第61-63页 |
参考文献 | 第63-73页 |
作者简介 | 第73页 |
硕士期间获得成果 | 第73页 |