| 致谢 | 第5-6页 |
| 摘要 | 第6-9页 |
| Abstract | 第9-11页 |
| 英文缩写词表 | 第12-16页 |
| 文献综述 | 第16-26页 |
| 引言 | 第26-27页 |
| 主要技术路线 | 第27-28页 |
| 1 材料与方法 | 第28-38页 |
| 1.1 实验材料 | 第28-30页 |
| 1.1.1 主要菌株及质粒 | 第28页 |
| 1.1.2 主要试剂配制以及材料 | 第28-29页 |
| 1.1.3 实验动物 | 第29页 |
| 1.1.4 主要仪器设备 | 第29-30页 |
| 1.2 实验方法 | 第30-38页 |
| 1.2.1 APEC生物被膜模型建立及其应用研究 | 第30-32页 |
| 1.2.2 luxS基因缺失对禽致病性大肠杆菌O_1、O_2和O_(78)血清型菌株的生物学特性分析 | 第32-34页 |
| 1.2.3 yaiC和rtn基因缺失及生物学特性分析 | 第34-38页 |
| 2 结果与分析 | 第38-54页 |
| 2.1 APEC生物被膜模型建立及其应用研究 | 第38-43页 |
| 2.1.1 DE17在不同培养条件下生物被膜形成情况。 | 第38页 |
| 2.1.2 DE17分别在LB(含糖类)和DMEM(含糖类)培养下生物被膜检测 | 第38-39页 |
| 2.1.3 激光共聚焦显微镜(CLSM)观察DE17生物被膜中细菌的生存能力。 | 第39-40页 |
| 2.1.4 扫描电镜(SEM)观察DE17生物被膜表面形态 | 第40-42页 |
| 2.1.5 环境因素和信号分子对DE17生物被膜形成的影响 | 第42页 |
| 2.1.6 49株O_1、O_2、O_(78)三种血清型的APEC生物被膜检测 | 第42-43页 |
| 2.2 luxS基因缺失对禽致病性大肠杆菌O_1、O_2和O_(78)血清型菌株的生物学特性分析 | 第43-47页 |
| 2.2.1 luxS缺失株与野生株生长曲线测定 | 第43-44页 |
| 2.2.2 luxS缺失株与野生株AI-2活性检测 | 第44页 |
| 2.2.3 luxS缺失株与野生株生物被膜形成能力检测 | 第44-45页 |
| 2.2.4 luxS缺失株与野生株rdar形态观察 | 第45页 |
| 2.2.5 luxS缺失株与野生株运动能力检测 | 第45-46页 |
| 2.2.6 luxS基因缺失影响鞭毛基因的转录水平 | 第46页 |
| 2.2.7 luxS缺失株与野生株耐药性检测 | 第46-47页 |
| 2.3 yaiC和rtn基因缺失及生物学特性分析 | 第47-54页 |
| 2.3.1 yaiC和rtn的生物信息学以及功能分析 | 第47-49页 |
| 2.3.2 缺失株DE17ΔyaiC和DE17Δrtn的构建 | 第49-50页 |
| 2.3.3 DE17,DE17?yaiC及DE17?rtn生长曲线测定 | 第50页 |
| 2.3.4 DE17,DE17?yaiC及DE17?rtn生物被膜形成能力检测 | 第50-51页 |
| 2.3.5 DE17,DE17?yaiC及DE17?rtnrdar形态观察 | 第51页 |
| 2.3.6 DE17,DE17?yaiC及DE17?rtn运动能力检测 | 第51-52页 |
| 2.3.7 DE17,DE17?yaiC及DE17?rtn耐药性检测 | 第52-53页 |
| 2.3.8 DE17,DE17?yaiC及DE17?rtn半数致死量LD50检测 | 第53-54页 |
| 3 讨论 | 第54-57页 |
| 3.1 DE17生物被膜模型建立及其调控研究 | 第54-55页 |
| 3.2 luxS基因缺失对禽致病性大肠杆菌O_1、O_2和O_(78)血清型菌株的生物学特性影响 | 第55-56页 |
| 3.3 yaiC和rtn基因缺失及生物学特性研究 | 第56-57页 |
| 4 结论 | 第57-58页 |
| 参考文献 | 第58-63页 |
| 作者简介 | 第63页 |
| 附作者在读研期间发表的学术论文 | 第63页 |
