| 摘要 | 第7-9页 |
| Abstract | 第9-10页 |
| 第1章 绪论 | 第11-19页 |
| 1.1 糖尿病(DM) | 第11-12页 |
| 1.1.1 一型糖尿病(T1DM) | 第11页 |
| 1.1.2 二型糖尿病(T2DM) | 第11-12页 |
| 1.2 葡萄糖转位体4(GLUT4) | 第12-15页 |
| 1.2.1 葡萄糖转位体4概述 | 第12页 |
| 1.2.2 己糖转位体家族概述 | 第12-13页 |
| 1.2.3 胰岛素信号通路对GLUT4的调控 | 第13页 |
| 1.2.4 胰岛素调节的氨基肽酶(IRAP)概述 | 第13-14页 |
| 1.2.5 IRAP的功能及与GLUT4之间的关系 | 第14-15页 |
| 1.3 荷叶碱 | 第15页 |
| 1.3.1 荷叶碱概述 | 第15页 |
| 1.3.2 荷叶碱生物活性的研究进展 | 第15页 |
| 1.4 研究方案 | 第15-19页 |
| 1.4.1 研究目的 | 第15-16页 |
| 1.4.2 研究内容 | 第16-18页 |
| 1.4.3 研究结果 | 第18-19页 |
| 第2章 实验仪器、材料和试剂 | 第19-23页 |
| 2.1 实验材料 | 第19页 |
| 2.1.1 实验对象 | 第19页 |
| 2.1.2 细胞培养 | 第19页 |
| 2.2 实验仪器及耗材 | 第19-20页 |
| 2.2.1 实验仪器 | 第19-20页 |
| 2.2.2 实验耗材 | 第20页 |
| 2.3 实验试剂 | 第20-21页 |
| 2.3.1 常用试剂 | 第20-21页 |
| 2.3.2 抗体及阻断剂 | 第21页 |
| 2.4 溶液配方 | 第21-23页 |
| 2.4.1 质粒转化所用培养基 | 第21页 |
| 2.4.2 细胞外液 | 第21-22页 |
| 2.4.3 Westernblotting所用缓冲液 | 第22-23页 |
| 第3章 实验原理与方法 | 第23-27页 |
| 3.1 培养L6细胞 | 第23页 |
| 3.2 利用激光共聚焦显微镜监测L6细胞GLUT4转位 | 第23-24页 |
| 3.3 利用激光共聚焦显微镜监测L6细胞内的Ca2+水平 | 第24页 |
| 3.4 细胞葡萄糖摄取实验 | 第24-25页 |
| 3.5 Westernblotting | 第25-27页 |
| 3.5.1 总蛋白的提取 | 第25-26页 |
| 3.5.2 Westernblotting具体步骤 | 第26-27页 |
| 第4章 荷叶碱促进L6细胞中GLUT4表达及转位和促进葡萄糖的摄取机制的研究 | 第27-35页 |
| 4.1 荷叶碱通过促进GLUT4表达及转位促进了L6细胞的葡萄糖摄取 | 第27-29页 |
| 4.1.1 荷叶碱碱促进L6细胞内的葡萄糖摄取 | 第27页 |
| 4.1.2 荷叶碱促进L6细胞内GLUT4的转位 | 第27-28页 |
| 4.1.3 荷叶碱促进了L6细胞的GLUT4的表达 | 第28-29页 |
| 4.2 荷叶碱通过AMPK信号通路和PKC信号通路促进L6细胞内GLUT4的转位 | 第29-31页 |
| 4.3 G蛋白-PLC-PKC信号通路参与了荷叶碱引起的L6细胞的GLUT4转位 | 第31-32页 |
| 4.4 Ca~(2+)在荷叶碱引起的GLUT4转位的过程中起到的作用 | 第32-33页 |
| 4.5 荷叶碱诱导的Ca2+的释放促进了葡萄糖的摄取 | 第33-34页 |
| 4.6 荷叶碱促进L6细胞葡萄糖摄取机制的总结 | 第34-35页 |
| 第5章 麦角甾醇促进L6细胞中GLUT4转位和表达 | 第35-38页 |
| 5.1 麦角甾醇促进L6细胞内GLUT4的转位 | 第35页 |
| 5.2 麦角甾醇促进L6细胞内GLUT4的表达 | 第35-36页 |
| 5.3 麦角甾醇通过Akt信号通路和PKC信号通路促进L6细胞内GLUT4的表达 | 第36-38页 |
| 第6章 苦豆子碱促进L6细胞的葡萄糖摄取及GLUT4的转位和表达 | 第38-41页 |
| 6.1 苦豆子碱促进L6细胞内GLUT4的转位 | 第38-39页 |
| 6.2 苦豆子碱通过促进L6细胞内的葡萄糖摄取 | 第39页 |
| 6.3 苦豆子碱促进L6细胞内GLUT4表达 | 第39-41页 |
| 讨论与展望 | 第41-43页 |
| 参考文献 | 第43-47页 |
| 致谢 | 第47-49页 |
| 附录研究生期间发表的文章 | 第49页 |
