常用英文缩写词 | 第10-11页 |
摘要 | 第11-12页 |
Abstract | 第12-13页 |
1 前言 | 第14-26页 |
1.1 神经生成概述 | 第14-20页 |
1.1.1 神经干细胞概述 | 第14-18页 |
1.1.1.1 胚胎神经干细胞 | 第14-16页 |
1.1.1.2 成体神经干细胞 | 第16-18页 |
1.1.2 神经生成和胶质生成的标志物 | 第18-20页 |
1.2 核孔复合体概述 | 第20-26页 |
1.2.1 核孔复合体结构 | 第20-22页 |
1.2.2 核孔蛋白概述 | 第22-23页 |
1.2.3 核膜的组装和解离 | 第23页 |
1.2.4 核孔蛋白的起源与进化 | 第23-24页 |
1.2.5 大分子物质入核和出核过程 | 第24-26页 |
2 实验材料与方法 | 第26-49页 |
2.1 实验材料 | 第26-32页 |
2.1.1 实验小鼠来源 | 第26页 |
2.1.2 小鼠基因型鉴定相关试剂 | 第26-27页 |
2.1.3 冰冻切片免疫荧光相关试剂 | 第27-28页 |
2.1.4 石蜡切片相关试剂 | 第28页 |
2.1.5 蛋白实验相关试剂 | 第28-31页 |
2.1.6 RNA实验相关试剂 | 第31页 |
2.1.7 TUNEL相关试剂及配方 | 第31-32页 |
2.2 实验仪器与耗材 | 第32-33页 |
2.3 实验方法 | 第33-49页 |
2.3.1 小鼠成纤维细胞的分离和培养 | 第33页 |
2.3.2 腺病毒感染 | 第33-34页 |
2.3.3 细胞免疫荧光染色 | 第34页 |
2.3.4 小鼠基因型鉴定 | 第34页 |
2.3.5 碱裂解法提取小鼠基因组DNA | 第34-37页 |
2.3.5.1 聚合酶链式反应 | 第35-36页 |
2.3.5.2 琼脂糖凝胶电泳 | 第36-37页 |
2.3.6 小鼠冰冻切片与石蜡切片及相关染色 | 第37-42页 |
2.3.6.1 小鼠繁育 | 第37页 |
2.3.6.2 小鼠冰冻切片样品制备 | 第37-38页 |
2.3.6.3 小鼠组织冰冻切片 | 第38-39页 |
2.3.6.4 小鼠石蜡切片样品制备 | 第39页 |
2.3.6.5 小鼠石蜡切片 | 第39-40页 |
2.3.6.6 冰冻切片免疫荧光 | 第40-41页 |
2.3.6.7 HE染色 | 第41-42页 |
2.3.7 TUNEL细胞凋亡检测 | 第42-43页 |
2.3.8 蛋白质印迹法 | 第43-46页 |
2.3.8.1 蛋白质样品的制备 | 第43-45页 |
2.3.8.2 蛋白质印迹法 | 第45-46页 |
2.3.9 组织总RNA的提取 | 第46-47页 |
2.3.10 逆转录 | 第47页 |
2.3.11 实时荧光定量PCR | 第47-49页 |
3 结果与分析 | 第49-69页 |
3.1 野生型小鼠seh1表达情况 | 第49-51页 |
3.1.1 seh1在各组织中表达情况 | 第49-50页 |
3.1.2 seh1表达量随小鼠发育过程呈增加趋势 | 第50-51页 |
3.2 全身性敲除seh1导致小鼠胚胎致死 | 第51-52页 |
3.3 条件性敲除seh1导致小鼠发育异常 | 第52-57页 |
3.4 在神经干细胞中敲除seh1对小鼠发育的影响 | 第57-64页 |
3.4.1 在神经干细胞中敲除seh1对神经细胞的影响 | 第57-59页 |
3.4.2 在神经干细胞中敲除seh1对胶质细胞的影响 | 第59-62页 |
3.4.3 在神经干细胞中敲除seh1对神经干细胞的影响 | 第62-64页 |
3.5 在神经干细胞中敲除seh1对成体小鼠神经干细胞的影响 | 第64-67页 |
3.6 seh1对神经系统发育影响机制的初步探索 | 第67-69页 |
4 讨论与展望 | 第69-71页 |
4.1 讨论 | 第69-70页 |
4.1.1 核孔蛋白seh1在中枢神经系统高表达 | 第69页 |
4.1.2 核孔蛋白seh1影响小鼠发育可能原因 | 第69-70页 |
4.1.3 核孔蛋白seh1对小鼠成体神经干细胞的影响 | 第70页 |
4.2 展望 | 第70-71页 |
4.2.1 神经干细胞的增殖与分化 | 第70页 |
4.2.2 核孔蛋白seh1与小头症 | 第70-71页 |
参考文献 | 第71-78页 |
致谢 | 第78页 |