| 摘要 | 第8-10页 |
| ABSTRACT | 第10-12页 |
| 缩略词表 | 第13-14页 |
| 绪论 | 第14-15页 |
| 第一章 文献综述 | 第15-35页 |
| 1 独脚金内酯的合成及信号转导 | 第15-22页 |
| 1.1 独脚金内酯(SL)的发现 | 第15-16页 |
| 1.2 独脚金内酯(SL)的生物合成 | 第16-17页 |
| 1.3 独脚金内酯的信号转导 | 第17-18页 |
| 1.4 独脚金内酯的生物学功能 | 第18-22页 |
| 2 植物防御反应 | 第22-28页 |
| 2.1 植物对蚜虫的物理防御 | 第22-25页 |
| 2.2 植物对蚜虫的化学防御 | 第25-28页 |
| 3 蚜虫诱导的植物防卫信号途径 | 第28-30页 |
| 3.1 JA/ET防卫信号路径 | 第28-29页 |
| 3.2 SA防卫信号路径 | 第29-30页 |
| 3.3 SA与JA/ET信号间的交互对话 | 第30页 |
| 3.4 SL与JA、SA信号间的交互对话 | 第30页 |
| 4 菊花抗蚜性研究进展 | 第30-32页 |
| 4.1 菊姬长管蚜的生物学特性 | 第31页 |
| 4.2 菊花抗蚜性机制研究进展 | 第31-32页 |
| 5 本研究的目的和意义 | 第32-35页 |
| 第二章 SL合成基因CmCCD8克隆与菊花遗传转化 | 第35-49页 |
| 1 材料与方法 | 第36-41页 |
| 1.1 试验材料、化学试剂、表达载体与菌株 | 第36页 |
| 1.2 外源GR24处理 | 第36页 |
| 1.3 CmCCD8基因的克隆与序列分析 | 第36-37页 |
| 1.4 CmCCD8基因的表达模式分析 | 第37页 |
| 1.5 pBIG-CmCCD8植物表达载体构建及遗传转化 | 第37-40页 |
| 1.6 CmCCD8超表达转基因菊花'神马'内源SL类似物含量测定 | 第40-41页 |
| 2 结果与分析 | 第41-47页 |
| 2.1 CmCCD8基因的克隆获得及序列特征 | 第41-43页 |
| 2.2 CmCCD8基因的表达特性 | 第43-45页 |
| 2.3 CmCCD8超表达遗传转化菊花及转基因植株鉴定 | 第45-46页 |
| 2.4 CmCCAS超表达转基因菊花‘神马’内源SL含量 | 第46-47页 |
| 3 讨论与结论 | 第47-49页 |
| 第三章 独脚金内酯调控菊花机械防御及初生代谢的抗蚜性机制 | 第49-73页 |
| 1 材料与方法 | 第51-56页 |
| 1.1 植物材料、化学试剂 | 第51页 |
| 1.2 外源GR24处理 | 第51页 |
| 1.3 转基因株系的抗蚜性鉴定 | 第51-52页 |
| 1.4 蚜虫取食刺吸电位检测 | 第52页 |
| 1.5 叶表皮微观形态观察 | 第52页 |
| 1.6 罗丹明B荧光检测法 | 第52页 |
| 1.7 叶片解剖结构观察 | 第52-53页 |
| 1.8 木质素含量的测定 | 第53页 |
| 1.9 纤维素含量的测定 | 第53-54页 |
| 1.10 半纤维素含量的测定 | 第54页 |
| 1.11 RNA-Seq发掘CmCCD8超表达植株中细胞壁合成相关差异基因 | 第54页 |
| 1.12 CmCCD8超表达植株中细胞壁合成相关差异表达基因的qRT-PCR分析 | 第54-55页 |
| 1.13 CmCCD8超表达转基因株系叶片初生代谢组分析 | 第55-56页 |
| 2 结果与分析 | 第56-69页 |
| 2.1 不同浓度GR24处理对菊花蚜虫增殖的影响 | 第56-58页 |
| 2.2 CmCCD8转基因植株的抗蚜性鉴定 | 第58-59页 |
| 2.3 CmCCD8转基因植株的蚜虫取食刺吸电位(EPG)图谱 | 第59-61页 |
| 2.4 CmCCD8转基因植株叶片表面结构特征 | 第61-62页 |
| 2.5 CmCCD8转基因植株叶片解剖结构特征 | 第62-63页 |
| 2.6 CmCCD8转基因植株细胞壁中木质素、纤维素、半纤维素含量 | 第63-64页 |
| 2.7 CmCCD8转基因植株细胞壁组分合成相关差异基因 | 第64-65页 |
| 2.8 CmCCD8转基因植株细胞壁合成相关差异基因的qRT-PCR验证 | 第65-66页 |
| 2.9 CmCCD8转基因植株叶片初生代谢组 | 第66-69页 |
| 3 结果与讨论 | 第69-73页 |
| 3.1 独脚金内酯介导菊花对蚜虫的敏感性 | 第69页 |
| 3.2 独脚金内酯影响叶片结构从而影响抗蚜性 | 第69-70页 |
| 3.3 独脚金内酯抑制细胞壁成分的合成,从而削弱菊花抗蚜性 | 第70-71页 |
| 3.4 独脚金内酯调控叶片初生代谢物的合成从而降低菊花抗蚜性 | 第71-73页 |
| 第四章 独脚金内酯调控菊花蚜虫趋避性机理研究 | 第73-97页 |
| 1 材料与方法 | 第74-79页 |
| 1.1 植物材料、化学试剂 | 第74页 |
| 1.2 外源激素处理 | 第74-75页 |
| 1.3 pTRV_(2e)-GFP-CnCCD8沉默载体构建 | 第75-76页 |
| 1.4 pTRV_(2e)-GFP-CnCCD8沉默载体瞬时转化菊花脑 | 第76-77页 |
| 1.5 “Y”型嗅觉仪——蚜虫趋避性试验 | 第77页 |
| 1.6 叶片挥发物的采集 | 第77-78页 |
| 1.7 GC-MS程序与色谱条件 | 第78页 |
| 1.8 CmCCD8转基因株系基于RNA-Seq萜类相关差异基因挖掘 | 第78页 |
| 1.9 转基因'神马'内源激素的测定 | 第78-79页 |
| 1.10 荧光实时定量PCR | 第79页 |
| 2 结果与分析 | 第79-93页 |
| 2.1 “Y”型嗅觉仪-蚜虫趋避性试验 | 第79-80页 |
| 2.2 CmCCD8转基因株系叶片的挥发性成分分析 | 第80-84页 |
| 2.3 CmCCD8转基因株系萜类相关差异表达基因 | 第84-85页 |
| 2.4 独脚金内酯对萜烯的合成调控 | 第85-86页 |
| 2.5 独脚金内酯减弱了ABA诱导的抗蚜性 | 第86-88页 |
| 2.6 独脚金内酯增强了SA对部分驱避萜烯合成的抑制作用 | 第88-89页 |
| 2.7 转基因株系中(E)-β-Farnesene和β-Caryophyllene不受JA调控 | 第89-90页 |
| 2.8 TRV_(2e)-GFP-CnCCD8瞬时沉默菊花脑植株的获得 | 第90-91页 |
| 2.9 菊花脑CnCCD8沉默株系对蚜虫的驱避性增强 | 第91-93页 |
| 3 讨论与结论 | 第93-97页 |
| 3.1 SL抑制驱避类萜烯的合成从而降低菊花对蚜虫的驱避性 | 第93页 |
| 3.2 SL与主要防御激素协同调节蚜虫驱避性 | 第93-97页 |
| 全文结论 | 第97-99页 |
| 创新点 | 第99-101页 |
| 参考文献 | 第101-119页 |
| 附录 | 第119-144页 |
| 攻读学位期间发表论文、申请专利及参与的科研项目 | 第144-147页 |
| 致谢 | 第147-148页 |
