| 中文摘要 | 第4-7页 |
| 英文摘要 | 第7-15页 |
| 第一章 前言 | 第15-22页 |
| 第二章 动脉移植动物模型的构建 | 第22-54页 |
| 2.1. 主要实验仪器 | 第22-23页 |
| 2.2. 主要实验试剂及配置 | 第23页 |
| 2.2.1 10%水合氯醛的配置方法: | 第23页 |
| 2.2.2 磷酸盐缓冲液PBS的配置方法: | 第23页 |
| 2.3. 实验动物 | 第23-24页 |
| 2.3.1 供体动物: | 第23-24页 |
| 2.3.2 受体动物: | 第24页 |
| 2.3.3 实验动物福利待遇: | 第24页 |
| 2.4. 实验方法 | 第24-32页 |
| 2.4.1 简介 | 第24页 |
| 2.4.2 供体大鼠和受体大鼠的麻醉与固定 | 第24-25页 |
| 2.4.3 供体SD大鼠手术实验步骤 | 第25-26页 |
| 2.4.4 受体Wistar大鼠手术实验步骤 | 第26-28页 |
| 2.4.5 供体SD-受体Wistar大鼠右颈总动脉移植手术实验步骤 | 第28-32页 |
| 2.5. 实验分组 | 第32-33页 |
| 2.6. 两组大鼠体重数据收集 | 第33页 |
| 2.7. 移植物对受体动物血清炎症因子的影响 | 第33-36页 |
| 2.7.1 测定受体大鼠血清TNF-α主要实验步骤及数据收集 | 第33-35页 |
| 2.7.2 测定受体大鼠血清IL-6主要实验步骤及数据收集 | 第35-36页 |
| 2.8. 移植物对受体动物血清血脂水平的影响 | 第36-40页 |
| 2.8.1 血清样本的采集与处理 | 第36页 |
| 2.8.2 测定受体大鼠血清甘油三酯TG含量 | 第36-37页 |
| 2.8.3 测定受体大鼠血清总胆固醇TC含量 | 第37-38页 |
| 2.8.4 测定受体大鼠血清低密度脂蛋白胆固醇LDL-C含量 | 第38-39页 |
| 2.8.5 测定受体大鼠血清高密度脂蛋白胆固醇HDL-C含量 | 第39-40页 |
| 2.9. 油红0染色观测实验组大鼠动脉形态学改变 | 第40-41页 |
| 2.9.1 油红0染色主要试剂及器械: | 第40页 |
| 2.9.2 油红0染色主要实验步骤 | 第40-41页 |
| 2.10. 统计学处理与分析 | 第41页 |
| 2.11. 实验结果 | 第41-52页 |
| 2.11.1 体重变化分析 | 第41-43页 |
| 2.11.2 移植物对受体血清炎症因子的影响 | 第43-47页 |
| 2.11.3 移植对大鼠血脂的影响 | 第47-51页 |
| 2.11.4 油红0染色结果 | 第51-52页 |
| 2.12. 本章小结 | 第52-54页 |
| 第三章 研究阿托伐他汀对移植术后受体动物的影响 | 第54-66页 |
| 3.1. 主要实验仪器与试剂 | 第54页 |
| 3.2. 实验动物 | 第54页 |
| 3.3. 实验方法 | 第54-58页 |
| 3.3.1 实验简介 | 第54-55页 |
| 3.3.2 实验分组 | 第55页 |
| 3.3.3 移植手术方法 | 第55页 |
| 3.3.4 移植+给药组实验方法 | 第55-56页 |
| 3.3.5 移植对照组实验方法 | 第56页 |
| 3.3.6 血清样本获取方法 | 第56页 |
| 3.3.7 体重数据收集 | 第56-57页 |
| 3.3.8 血清炎症因子的检测、血脂四项的检测、油红0染色方法 | 第57页 |
| 3.3.9 H&E染色实验步骤 | 第57-58页 |
| 3.4. 统计学处理与分析 | 第58-59页 |
| 3.5. 实验结果 | 第59-65页 |
| 3.5.1 体重变化分析 | 第59页 |
| 3.5.2 炎症因子变化分析 | 第59-61页 |
| 3.5.3 血脂四项变化分析 | 第61-63页 |
| 3.5.4 油红0染色-三组大鼠右颈总动脉对比 | 第63-64页 |
| 3.5.5 H&E染色-三组大鼠右颈总动脉对比 | 第64-65页 |
| 3.6. 本章小结 | 第65-66页 |
| 第四章 讨论 | 第66-70页 |
| 第五章 结论与展望 | 第70-71页 |
| 缩略语表 | 第71-72页 |
| 参考文献 | 第72-84页 |
| 致谢 | 第84-85页 |
