摘要 | 第4-6页 |
ABSTRACT | 第6-7页 |
第一章 绪论 | 第10-25页 |
1.1 研究背景 | 第10-12页 |
1.1.1 手性药物 | 第10-11页 |
1.1.2 手性药物—4-氯-3-羟基丁酸乙酯 | 第11-12页 |
1.2 光学活性的CHBE的制备方法 | 第12-18页 |
1.2.1 化学催化加氢法 | 第12页 |
1.2.2 外消旋体的拆分 | 第12-14页 |
1.2.3 生物催化不对称还原 | 第14-18页 |
1.3 本论文的研究内容 | 第18-19页 |
参考文献 | 第19-25页 |
第二章 羰基还原酶产生菌的筛选与鉴定 | 第25-38页 |
2.1 引言 | 第25页 |
2.2 菌种筛选 | 第25-28页 |
2.2.1 土样 | 第25页 |
2.2.2 化学试剂与主要仪器 | 第25-26页 |
2.2.3 培养基 | 第26页 |
2.2.4 菌种筛选过程 | 第26-27页 |
2.2.5 菌种鉴定 | 第27-28页 |
2.2.6 羰基还原酶粗酶的制备 | 第28页 |
2.2.7 菌株ZJB-12164羰基还原酶粗酶辅酶依赖型的确定 | 第28页 |
2.3 结果与讨论 | 第28-36页 |
2.3.1 检测方法的建立 | 第28-30页 |
2.3.2 菌种的筛选结果 | 第30页 |
2.3.3 产物与底物的鉴定 | 第30-32页 |
2.3.4 菌株ZJB-12164的鉴定 | 第32-36页 |
2.3.5 C.sorboxylosa ZJB-12164羰基还原酶粗酶的辅酶依赖型 | 第36页 |
2.4 本章小结 | 第36页 |
参考文献 | 第36-38页 |
第三章 C.sorboxylosa ZJB-12164产酶条件优化 | 第38-48页 |
3.1 引言 | 第38页 |
3.2 材料与方法 | 第38-39页 |
3.2.1 菌株 | 第38页 |
3.2.2 培养基 | 第38页 |
3.2.3 菌体培养 | 第38-39页 |
3.2.4 生物量测定 | 第39页 |
3.2.5 羰基还原酶酶活的测定 | 第39页 |
3.2.6 气相色谱分析方法 | 第39页 |
3.3 结果与讨论 | 第39-46页 |
3.3.1 培养基成分的优化 | 第39-43页 |
3.3.2 发酵条件的优化 | 第43-45页 |
3.3.3 C.sorboxylosa ZJB-12164生长及产酶曲线 | 第45页 |
3.3.4 C.sorboxylosa ZJB-12164的转化进程 | 第45-46页 |
3.4 本章小结 | 第46-47页 |
参考文献 | 第47-48页 |
第四章 C.sorboxylosa ZJB-12164全细胞催化制备(S)-4-氯-3-羟基丁酸乙酯的研究 | 第48-63页 |
4.1 引言 | 第48-49页 |
4.2 材料与方法 | 第49页 |
4.2.1 菌种 | 第49页 |
4.2.2 培养基 | 第49页 |
4.2.3 菌体培养方法 | 第49页 |
4.2.4 反应的产率以及产物光学纯度的测定 | 第49页 |
4.2.5 气相分析方法 | 第49页 |
4.3 结果与讨论 | 第49-59页 |
4.3.1 细胞保藏时间对催化反应的影响 | 第49-50页 |
4.3.2 辅助底物及其浓度对催化反应的影响 | 第50-51页 |
4.3.3 最适转化温度的选择 | 第51-53页 |
4.3.4 最适转化pH的选择 | 第53-54页 |
4.3.5 最适底物浓度的选择 | 第54页 |
4.3.6 在S/C相同的情况下,不同底物浓度对转化的影响 | 第54-56页 |
4.3.7 分批次加入底物对催化反应的影响 | 第56页 |
4.3.8 控制反应体系pH值对催化还原反应影响 | 第56-57页 |
4.3.9 200 mL体系催化反应进程 | 第57-58页 |
4.3.10 助溶剂对催化反应的影响 | 第58页 |
4.3.11 水/有机溶剂两相体系对催化反应的影响 | 第58-59页 |
4.4 本章小结 | 第59-60页 |
参考文献 | 第60-63页 |
第五章 结论与展望 | 第63-65页 |
5.1 结论 | 第63-64页 |
5.2 展望 | 第64-65页 |
攻读硕士学位期间发表论文情况 | 第65-66页 |
致谢 | 第66页 |