| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-8页 |
| 第一章 文献综述 | 第14-27页 |
| 1.1 壳聚糖的简介与来源 | 第14-15页 |
| 1.2 壳聚糖的性质 | 第15-16页 |
| 1.3 壳聚糖的降解方法 | 第16-20页 |
| 1.3.1 壳聚糖的物理降解法 | 第16页 |
| 1.3.2 壳聚糖化学降解法 | 第16-18页 |
| 1.3.2.1 亚硝酸钠降解法 | 第16页 |
| 1.3.2.2 酸降解法 | 第16-17页 |
| 1.3.2.3 氧化降解法 | 第17-18页 |
| 1.3.3 壳聚糖的酶降解法 | 第18-19页 |
| 1.3.3.1 专一性酶降解法 | 第18-19页 |
| 1.3.3.2 非专一性酶降解法 | 第19页 |
| 1.3.4 壳聚糖的复合降解法 | 第19-20页 |
| 1.4 壳聚糖微粒的制备方法研究 | 第20-22页 |
| 1.4.1 凝聚沉淀法 | 第20页 |
| 1.4.2 乳化溶剂扩散挥发法 | 第20-21页 |
| 1.4.3 共价交联法 | 第21页 |
| 1.4.4 离子交联法 | 第21-22页 |
| 1.4.5 大分子复合法 | 第22页 |
| 1.4.6 自组装法 | 第22页 |
| 1.5 壳聚糖的应用研究 | 第22-25页 |
| 1.5.1 食品领域的应用 | 第22-23页 |
| 1.5.2 水处理中的应用 | 第23-24页 |
| 1.5.3 在医药领域中的应用 | 第24-25页 |
| 1.6 本课题的研究目的与意义 | 第25页 |
| 1.7 本课题主要研究内容 | 第25-27页 |
| 第二章 低聚壳聚糖的酶法制备 | 第27-36页 |
| 引言 | 第27-28页 |
| 2.1 实验材料 | 第28页 |
| 2.1.1 实验仪器 | 第28页 |
| 2.1.2 实验原料与试剂 | 第28页 |
| 2.2 实验方法 | 第28-30页 |
| 2.2.1 非专一性酶法降解壳聚糖 | 第28-29页 |
| 2.2.2 壳聚糖黏均分子量的测定 | 第29-30页 |
| 2.2.2.1 粘度法测定原理 | 第29页 |
| 2.2.2.2 测定方法 | 第29-30页 |
| 2.2.3 酶法降解工艺的单因素实验 | 第30页 |
| 2.3 结果与分析 | 第30-34页 |
| 2.3.1 不同pH值对酶法降解结果的影响 | 第30-31页 |
| 2.3.2 不同反应温度对酶法降解结果的影响 | 第31-32页 |
| 2.3.3 不同反应时间对酶法降解结果的影响 | 第32页 |
| 2.3.4 不同加酶量对酶法降解结果的影响 | 第32-33页 |
| 2.3.5 不同的底物浓度对酶法降解结果的影响 | 第33-34页 |
| 2.4 本章小结 | 第34-36页 |
| 第三章 水相溶剂体系中壳聚糖微粒的制备 | 第36-47页 |
| 引言 | 第36页 |
| 3.1 实验材料与仪器 | 第36-37页 |
| 3.1.1 实验仪器 | 第36-37页 |
| 3.1.2 实验原料与试剂 | 第37页 |
| 3.2 实验方法 | 第37-38页 |
| 3.2.1 离子交联法制备壳聚糖微粒 | 第37页 |
| 3.2.2 壳聚糖微粒粒径测定 | 第37页 |
| 3.2.3 单因素实验 | 第37-38页 |
| 3.3 结果与分析 | 第38-45页 |
| 3.3.1 壳聚糖平均相对分子量大小对壳聚糖微粒粒径的影响 | 第38-39页 |
| 3.3.2 不同乳化方式对壳聚糖微粒粒径的影响 | 第39-40页 |
| 3.3.3 不同乳化剂浓度对壳聚糖微粒粒径的影响 | 第40-41页 |
| 3.3.4 不同乳化分散时间对壳聚糖微粒粒径的影响 | 第41-42页 |
| 3.3.5 不同三聚磷酸钠(TPP)浓度对壳聚糖微粒粒径的影响 | 第42-43页 |
| 3.3.6 不同三聚磷酸钠(TPP)滴加速度对壳聚糖微粒粒径的影响 | 第43-44页 |
| 3.3.7 不同壳聚糖浓度对壳聚糖微粒粒径的影响 | 第44页 |
| 3.3.8 水相溶剂体系中制备壳聚糖微粒的最佳工艺条件 | 第44-45页 |
| 3.4 本章小结 | 第45-47页 |
| 第四章 两相溶剂体系中壳聚糖微粒的制备 | 第47-65页 |
| 引言 | 第47-48页 |
| 4.1 实验材料与方法 | 第48页 |
| 4.1.1 实验仪器 | 第48页 |
| 4.1.2 实验试剂 | 第48页 |
| 4.2 实验方法 | 第48-50页 |
| 4.2.1 不同表面活性剂的选择 | 第48页 |
| 4.2.2 壳聚糖微粒的制备 | 第48-49页 |
| 4.2.4 破乳方式的选择 | 第49页 |
| 4.2.5 制备工艺的单因素实验 | 第49页 |
| 4.2.6 壳聚糖微粒粒径测定 | 第49-50页 |
| 4.3 结果与分析 | 第50-63页 |
| 4.3.1 表面活性剂的确立 | 第50页 |
| 4.3.2 破乳方式的确立 | 第50-55页 |
| 4.3.2.1 破乳时是否超声的考察 | 第50-51页 |
| 4.3.2.2 超声对壳聚糖微粒粒径和分散性的影响 | 第51-52页 |
| 4.3.2.3 破乳时加入乙酸钠的量的考察 | 第52-53页 |
| 4.3.2.4 破乳时离心速度的选择 | 第53-54页 |
| 4.3.2.5 壳聚糖微粒溶液离心后粒径变化情况 | 第54-55页 |
| 4.3.3 单因素对壳聚糖微粒粒径的影响 | 第55-63页 |
| 4.3.3.1 有机溶剂种类对壳聚糖微粒粒径的影响 | 第55-56页 |
| 4.3.3.2 壳聚糖醋酸溶液与山茶油不同体积比对壳聚糖微粒粒径的影响 | 第56-57页 |
| 4.3.3.3 加入表面活性剂的量对壳聚糖微粒粒径的影响 | 第57-58页 |
| 4.3.3.4 乳化成乳时间对壳聚糖微粒粒径的影响 | 第58-59页 |
| 4.3.3.5 反应pH值对壳聚糖微粒粒径的影响 | 第59-60页 |
| 4.3.3.6 TPP浓度对壳聚糖微粒粒径的影响 | 第60-61页 |
| 4.3.3.7 壳聚糖醋酸溶液与TPP溶液体积比对壳聚糖微粒粒径的影响 | 第61-62页 |
| 4.3.3.8 搅拌速度对壳聚糖微粒粒径的影响 | 第62-63页 |
| 4.4 本章小结 | 第63-65页 |
| 第五章 壳聚糖微粒的性能研究 | 第65-79页 |
| 引言 | 第65-66页 |
| 5.1 实验仪器与材料 | 第66-67页 |
| 5.1.1 实验仪器 | 第66页 |
| 5.1.2 实验原料与试剂 | 第66-67页 |
| 5.1.3 培养基 | 第67页 |
| 5.1.4 营养液的配制 | 第67页 |
| 5.2 实验方法 | 第67-70页 |
| 5.2.1 壳聚糖微粒的稳定性考察 | 第67页 |
| 5.2.2 壳聚糖微粒的杀菌性能考察 | 第67-69页 |
| 5.2.2.1 菌种的培养 | 第67-68页 |
| 5.2.2.2 壳聚糖微粒杀菌活性 | 第68页 |
| 5.2.2.3 不同粒径的壳聚糖微粒杀菌活性 | 第68页 |
| 5.2.2.4 壳聚糖微粒的持续杀菌性能考察 | 第68-69页 |
| 5.2.2.5 杀菌率的测定 | 第69页 |
| 5.2.3 壳聚糖微粒的体外抗肿瘤生物学效应考察 | 第69-70页 |
| 5.2.3.1 实验分组 | 第69页 |
| 5.2.3.2 肿瘤细胞的培养 | 第69页 |
| 5.2.3.3 MTT法测定抑制率 | 第69-70页 |
| 5.3 实验结果与分析 | 第70-78页 |
| 5.3.1 壳聚糖微粒的稳定性考察结果 | 第70-74页 |
| 5.3.1.1 存放时间对壳聚糖微粒粒径稳定性的影响 | 第70-71页 |
| 5.3.1.2 pH值对壳聚糖微粒粒径稳定性的影响 | 第71-72页 |
| 5.3.1.3 温度对壳聚糖微粒粒径稳定性的影响 | 第72-73页 |
| 5.3.1.4 旋转蒸馏浓缩对壳聚糖微粒粒径的影响 | 第73-74页 |
| 5.3.2 壳聚糖微粒的杀菌性能考察结果 | 第74-77页 |
| 5.3.2.1 壳聚糖微粒杀菌活性结果 | 第74-75页 |
| 5.3.2.2 不同粒径的壳聚糖微粒杀菌活性结果 | 第75页 |
| 5.3.2.3 壳聚糖微粒的持续杀菌性能结果 | 第75-77页 |
| 5.3.3 壳聚糖微粒的体外抗肿瘤生物学效应结果 | 第77-78页 |
| 5.4 本章小结 | 第78-79页 |
| 第六章 结论与展望 | 第79-81页 |
| 6.1 结论 | 第79-80页 |
| 6.2 展望 | 第80-81页 |
| 参考文献 | 第81-88页 |
| 攻读硕士学位期间发表的论文 | 第88-89页 |
| 致谢 | 第89页 |
