| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-7页 |
| 第1章 前言 | 第11-25页 |
| 1.1 光/暗调控气孔运动的信号转导途径研究现状 | 第11-12页 |
| 1.2 MAPK信号级联途径与气孔运动的关系 | 第12-14页 |
| 1.2.1 植物MAPK的结构和其活化机制 | 第12页 |
| 1.2.2 MAPK信号级联途径的作用 | 第12-14页 |
| 1.2.3 MAPK信号级联途径在气孔运动中的作用 | 第14页 |
| 1.3 H_2O_2与气孔运动的关系 | 第14-16页 |
| 1.3.1 植物中H_2O_2的产生途径和生理功能 | 第14-15页 |
| 1.3.2 H_2O_2在气孔运动中的作用 | 第15-16页 |
| 1.4 NO与气孔运动的关系 | 第16-19页 |
| 1.4.1 植物中NO的产生途径和生理功能 | 第16-18页 |
| 1.4.2 NO在气孔运动中的作用 | 第18-19页 |
| 1.5 H_2O_2与NO之间的相互关系 | 第19-20页 |
| 1.6 MAPK信号途径与H_2O_2和NO的相互关系 | 第20-22页 |
| 1.6.1 MAPK信号途径与H_2O_2的关系 | 第20-21页 |
| 1.6.2 MAPK信号途径与NO的关系 | 第21-22页 |
| 1.7 论文选题的目的与意义 | 第22-25页 |
| 第2章 材料与方法 | 第25-31页 |
| 2.1 实验材料、试剂及仪器 | 第25页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第25页 |
| 2.1.2 试剂 | 第25页 |
| 2.1.3 仪器 | 第25页 |
| 2.2 实验方法 | 第25-31页 |
| 2.2.1 拟南芥T-DNA插入纯合突变体的鉴定 | 第26-28页 |
| 2.2.2 实验材料的培养和气孔分析叶片的选择 | 第28页 |
| 2.2.3 拟南芥气孔开度分析 | 第28-29页 |
| 2.2.4 保卫细胞内源H_2O_2和NO的检测 | 第29页 |
| 2.2.5 数据分析方法 | 第29-31页 |
| 第3章 实验结果与分析 | 第31-53页 |
| 3.1 暗诱导拟南芥气孔关闭的适宜时间 | 第31页 |
| 3.2 AtMEK1-AtMPK6信号级联途径在暗诱导拟南芥叶片气孔关闭中的作用 | 第31-37页 |
| 3.2.1 AtMEK1参与了暗诱导拟南芥气孔关闭的过程 | 第31-35页 |
| 3.2.2 AtMPK6参与了暗诱导拟南芥气孔关闭的过程 | 第35-37页 |
| 3.3 H_2O_2、NO参与暗诱导的拟南芥气孔关闭 | 第37-48页 |
| 3.3.1 H_2O_2参与暗诱导的拟南芥气孔关闭 | 第37-41页 |
| 3.3.2 NO参与暗诱导的拟南芥气孔关闭 | 第41-45页 |
| 3.3.3 暗诱导拟南芥气孔关闭的过程中H_2O_2与NO的关系 | 第45-48页 |
| 3.4 暗诱导拟南芥气孔关闭过程中AtMEK1和AtMPK6分别与H_2O_2的关系 | 第48-51页 |
| 3.4.1 H_2O_2对AtMEK1和AtMPK6突变体气孔运动的影响 | 第48-49页 |
| 3.4.2 暗对AtMEK1和AtMPK6突变体中H_2O_2水平的影响 | 第49-51页 |
| 3.5 暗诱导拟南芥气孔关闭过程中AtMEK1和AtMPK6分别与NO的关系 | 第51-53页 |
| 3.5.1 NO对AtMEK1和AtMPK6突变体气孔运动的影响 | 第51-52页 |
| 3.5.2 暗对AtMEK1和AtMPK6突变体中NO水平的影响 | 第52-53页 |
| 第4章 讨论 | 第53-57页 |
| 4.1 暗诱导拟南芥气孔关闭过程中H_2O_2与NO的形成途径及其相互关系 | 第53-54页 |
| 4.1.1 暗诱导拟南芥气孔关闭过程中H_2O_2与NO的形成途径 | 第53页 |
| 4.1.2 暗诱导拟南芥气孔关闭过程中H_2O_2与NO的相互关系 | 第53-54页 |
| 4.2 AtMEK1与AtMPK6在暗诱导拟南芥气孔关闭中的作用及其与H_2O_2和NO的上、下游关系 | 第54-57页 |
| 第5章 总结 | 第57-59页 |
| 参考文献 | 第59-73页 |
| 致谢 | 第73-75页 |
| 攻读硕士学位期间研究成果 | 第75页 |
