摘要 | 第4-7页 |
Abstract | 第7-9页 |
英文缩略语 | 第10-15页 |
第一部分: 自噬对血管紧张素Ⅱ诱导人肾小球系膜细胞衰老的调节作用 | 第15-29页 |
1 前言 | 第15-16页 |
2 材料与方法 | 第16-21页 |
2.1 实验材料 | 第16-18页 |
2.1.1 细胞来源 | 第16页 |
2.1.2 主要试剂和药品 | 第16-17页 |
2.1.3 主要仪器设备 | 第17页 |
2.1.4 主要试剂配制 | 第17-18页 |
2.2 实验方法 | 第18-21页 |
2.2.1 人肾小球系膜细胞培养 | 第18页 |
2.2.2 建立人肾小球系膜细胞衰老模型 | 第18页 |
2.2.3 实验分组 | 第18页 |
2.2.4 指标的检测 | 第18-20页 |
2.2.5 统计学方法 | 第20-21页 |
3 结果 | 第21-26页 |
3.1 血管紧张素Ⅱ诱导人肾小球系膜细胞衰老 | 第21-22页 |
3.2 AngⅡ诱导人肾小球系膜细胞衰老过程中自噬活性增强 | 第22-23页 |
3.3 自噬介导血管紧张素Ⅱ诱导人肾小球系膜细胞衰老 | 第23-26页 |
3.3.1 Western blot结果 | 第23-24页 |
3.3.2 电镜结果 | 第24-25页 |
3.3.3 β-半乳糖苷酶染色结果 | 第25-26页 |
4 讨论 | 第26-28页 |
5 结论 | 第28-29页 |
第二部分 :STAT3/mTOR调控的自噬在血管紧张素Ⅱ诱导人肾小球系膜细胞衰老中的作用 | 第29-41页 |
1 前言 | 第29-30页 |
2 材料与方法 | 第30-33页 |
2.1 实验材料 | 第30-31页 |
2.1.1 细胞来源 | 第30页 |
2.1.2 主要试剂和药品 | 第30页 |
2.1.3 主要仪器设备 | 第30页 |
2.1.4 主要试剂配制 | 第30-31页 |
2.2 实验方法 | 第31-33页 |
2.2.1 人肾系膜细胞培养 | 第31页 |
2.2.2 细胞转染 | 第31页 |
2.2.3 实验分组 | 第31页 |
2.2.4 指标的检测 | 第31-32页 |
2.2.5 统计学方法 | 第32-33页 |
3 结果 | 第33-38页 |
3.1 血管紧张素Ⅱ诱导人肾小球系膜细胞衰老过程中STAT3激活,mTOR通路活性受抑制 | 第33页 |
3.2 药物或基因沉默STAT3表达,减轻人肾小球系膜细胞自噬及衰老 | 第33-37页 |
3.2.1 Western blot结果 | 第33-35页 |
3.2.2 电镜结果 | 第35-36页 |
3.2.3 β-半乳糖苷酶染色结果 | 第36-37页 |
3.3 药物或基因沉默STAT3表达,逆转mTOR活性 | 第37-38页 |
4 讨论 | 第38-40页 |
5 结论 | 第40-41页 |
第三部分: 氯沙坦、普罗布考调控的STAT3/mTOR活性对血管紧张素Ⅱ诱导的HGMC自噬及细胞衰老的影响 | 第41-53页 |
1 前言 | 第41-42页 |
2 材料与方法 | 第42-45页 |
2.1 实验材料 | 第42-43页 |
2.1.1 细胞来源 | 第42页 |
2.1.2 主要试剂和药品 | 第42-43页 |
2.1.3 主要仪器设备 | 第43页 |
2.1.4 主要试剂配制 | 第43页 |
2.2 实验方法 | 第43-45页 |
2.2.1 人肾系膜细胞培养 | 第43-44页 |
2.2.2 实验分组 | 第44页 |
2.2.3 指标的检测 | 第44页 |
2.2.4 统计学方法 | 第44-45页 |
3 结果 | 第45-50页 |
3.1 氯沙坦、普罗布考减轻血管紧张素Ⅱ诱导人肾小球系膜细胞的自噬及衰老 | 第45-48页 |
3.1.1 Western blot结果 | 第45-46页 |
3.1.2 电镜结果 | 第46-47页 |
3.1.3 β-半乳糖苷酶染色结果 | 第47页 |
3.1.4 活性氧测定 | 第47-48页 |
3.3 氯沙坦、普罗布考抑制STAT3活化,恢复血管紧张素Ⅱ对mTOR活性的抑制 | 第48-50页 |
4 讨论 | 第50-52页 |
5 结论 | 第52-53页 |
参考文献 | 第53-60页 |
本研究创新性的自我评价 | 第60-61页 |
综述 | 第61-73页 |
参考文献 | 第66-73页 |
攻读学位期间所取得的研究成果 | 第73-74页 |
致谢 | 第74-75页 |
个人简介 | 第75页 |