| 摘要 | 第2-3页 |
| Abstract | 第3-4页 |
| 引言 | 第9-10页 |
| 1 根表细菌生物膜在多环芳烃土壤污染修复中的应用 | 第10-27页 |
| 1.1 土壤多环芳烃污染现状 | 第10-15页 |
| 1.1.1 多环芳烃的性质及其污染源 | 第10-12页 |
| 1.1.2 多环芳烃的危害 | 第12-13页 |
| 1.1.3 我国土壤多环芳烃污染现状 | 第13-15页 |
| 1.2 土壤多环芳烃污染的生物修复 | 第15-19页 |
| 1.2.1 土壤多环芳烃污染修复技术 | 第15-16页 |
| 1.2.2 微生物修复 | 第16-18页 |
| 1.2.3 植物修复 | 第18-19页 |
| 1.2.4 微生物-植物联合修复 | 第19页 |
| 1.3 根表细菌生物膜及其对有机污染物的调控 | 第19-25页 |
| 1.3.1 细菌生物膜 | 第19-22页 |
| 1.3.2 根表细菌生物膜及其生物学功能 | 第22-23页 |
| 1.3.3 根表细菌生物膜在有机污染物污染修复中的作用 | 第23-24页 |
| 1.3.4 根表细菌生物膜对植物吸收有机污染物的影响 | 第24-25页 |
| 1.4 选题依据和研究内容 | 第25-27页 |
| 2 菲污染物对小麦的毒性胁迫效应 | 第27-40页 |
| 2.1 引言 | 第27页 |
| 2.2 实验材料与设备 | 第27-29页 |
| 2.2.1 实验材料 | 第27页 |
| 2.2.2 实验设备 | 第27-28页 |
| 2.2.3 实验试剂 | 第28-29页 |
| 2.3 实验方法 | 第29-33页 |
| 2.3.1 小麦种子的萌发与培养 | 第29-30页 |
| 2.3.2 菲污染胁迫浓度的设定 | 第30页 |
| 2.3.3 小麦生长状态及生物量的测定 | 第30页 |
| 2.3.4 小麦体内菲的提取及含量的测定 | 第30-31页 |
| 2.3.5 小麦叶片中粗酶提取液的制备 | 第31页 |
| 2.3.6 超氧化物歧化酶(SOD)活性的测定 | 第31-32页 |
| 2.3.7 过氧化物酶(POD)活性的测定 | 第32页 |
| 2.3.8 叶绿素含量的测定 | 第32-33页 |
| 2.3.9 数据处理与分析 | 第33页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第33-39页 |
| 2.4.1 不同浓度菲对小麦生长状况的影响 | 第33-35页 |
| 2.4.2 不同浓度菲胁迫下小麦体内菲的积累量 | 第35-36页 |
| 2.4.3 不同浓度菲对小麦叶片内POD活性的影响 | 第36-37页 |
| 2.4.4 不同浓度菲对小麦叶片内SOD活性的影响 | 第37-38页 |
| 2.4.5 不同浓度菲对小麦光合作用强度的影响 | 第38-39页 |
| 2.5 本章小结 | 第39-40页 |
| 3 小麦根表菲降解菌生物膜的构建与表征 | 第40-52页 |
| 3.1 引言 | 第40页 |
| 3.2 实验材料与设备 | 第40-42页 |
| 3.2.1 实验材料 | 第40页 |
| 3.2.2 实验设备 | 第40-41页 |
| 3.2.3 实验试剂 | 第41-42页 |
| 3.3 实验方法 | 第42-45页 |
| 3.3.1 菲降解菌Pseudomonas.spJM2的荧光标记 | 第42页 |
| 3.3.2 菲降解菌Pseudomonas.spJM2-gfp生长曲线的测定 | 第42-43页 |
| 3.3.3 菲降解菌Pseudomonas.spJM2-gfp降解能力的测定 | 第43页 |
| 3.3.4 小麦根表菲降解菌生物膜的构建 | 第43页 |
| 3.3.5 小麦根表菲降解菌生物膜形成过程的观察 | 第43-44页 |
| 3.3.6 小麦体内菲降解菌菌量的统计 | 第44页 |
| 3.3.7 小麦根表菲降解菌生物膜稳定性的测定 | 第44页 |
| 3.3.8 小麦根表菲降解菌生物膜的表征 | 第44页 |
| 3.3.9 数据处理与分析 | 第44-45页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第45-51页 |
| 3.4.1 菲降解菌Pseudomonas.spJM2-gfp的构建 | 第45页 |
| 3.4.2 GFP标记对降解菌株生长特性与降解能力的影响 | 第45-47页 |
| 3.4.3 小麦根表菲降解菌生物膜的构建 | 第47-48页 |
| 3.4.4 小麦根表菲降解菌生物膜的稳定性 | 第48-49页 |
| 3.4.5 菲降解菌JM2-gfp在小麦根表和体内的定殖情况 | 第49-50页 |
| 3.4.6 小麦根表菲降解菌生物膜形态表征 | 第50-51页 |
| 3.5 本章小结 | 第51-52页 |
| 4 根表菲降解菌生物膜对小麦体内菲积累量的阻控效果研究 | 第52-66页 |
| 4.1 引言 | 第52页 |
| 4.2 实验材料与设备 | 第52-53页 |
| 4.2.1 实验材料 | 第52页 |
| 4.2.2 实验设备 | 第52-53页 |
| 4.2.3 实验试剂 | 第53页 |
| 4.3 实验方法 | 第53-55页 |
| 4.3.1 温室水培实验 | 第53-54页 |
| 4.3.2 培养液与小麦体内降解菌数量的统计 | 第54页 |
| 4.3.3 培养液与小麦体内菲含量测定 | 第54页 |
| 4.3.4 菲在小麦体内的积累和传导 | 第54-55页 |
| 4.3.5 数据处理与分析 | 第55页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第55-64页 |
| 4.4.1 菲降解菌JM2-gfp在小麦内的定殖与分布情况 | 第55-56页 |
| 4.4.2 根表菲降解菌生物膜对小麦生长状况的影响 | 第56-58页 |
| 4.4.3 根表菲降解菌生物膜对小麦体内菲含量的影响 | 第58-60页 |
| 4.4.4 根表菲降解菌生物膜对溶液中菲的去除 | 第60-61页 |
| 4.4.5 根表菲降解菌生物膜对小麦叶片内POD活性的影响 | 第61-63页 |
| 4.4.6 根表菲降解菌生物膜对小麦叶片内SOD活性的影响 | 第63页 |
| 4.4.7 根表菲降解菌生物膜对小麦光合作用强度的影响 | 第63-64页 |
| 4.5 本章小结 | 第64-66页 |
| 结论 | 第66-67页 |
| 展望 | 第67-68页 |
| 参考文献 | 第68-77页 |
| 附录A 本论文所用培养基配方 | 第77-79页 |
| 攻读硕士学位期间发表学术论文情况 | 第79-80页 |
| 致谢 | 第80-82页 |
