| 摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-10页 |
| 英文缩略语 | 第11-17页 |
| 第一部分 人体脂肪组织细胞外基质的提取与鉴定 | 第17-35页 |
| 1 前言 | 第17-19页 |
| 2 材料与方法 | 第19-23页 |
| 2.1 实验材料 | 第19-20页 |
| 2.1.1 取材来源 | 第19页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第19页 |
| 2.1.3 主要仪器 | 第19-20页 |
| 2.2 实验方法 | 第20-23页 |
| 2.2.1 人吸脂来源脂肪组织的脱细胞过程 | 第20页 |
| 2.2.2 DAT的组织学染色 | 第20-21页 |
| 2.2.3 DAT中残余DNA含量及胶原蛋白,糖胺聚糖含量检测 | 第21-22页 |
| 2.2.4 统计学分析 | 第22-23页 |
| 3 结果 | 第23-30页 |
| 3.1 人脂肪组织脱细胞过程及大体形态观察 | 第23页 |
| 3.2 DAT的组织学染色 | 第23-29页 |
| 3.2.1 HE染色 | 第23-24页 |
| 3.2.2 Masson染色 | 第24-25页 |
| 3.2.3 Gomori染色,地衣红染色和油红O染色 | 第25-26页 |
| 3.2.4 DAPI染色 | 第26-27页 |
| 3.2.5 I、IV型胶原蛋白,层连蛋白(LN),纤连蛋白(FN)的免疫组织化学染色 | 第27-29页 |
| 3.3 DAT中残余DNA含量检测及胶原蛋白和GAG的含量检测 | 第29-30页 |
| 4 讨论 | 第30-34页 |
| 5 结论 | 第34-35页 |
| 第二部分 人脂肪来源干细胞的分离培养鉴定 | 第35-45页 |
| 1 前言 | 第35-36页 |
| 2 材料与方法 | 第36-39页 |
| 2.1.1 组织来源 | 第36页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第36页 |
| 2.1.3 主要仪器 | 第36页 |
| 2.1.4 主要配液 | 第36-37页 |
| 2.2 实验方法 | 第37-39页 |
| 2.2.1 ADSCs体外分离培养 | 第37页 |
| 2.2.2 ADSCs传代培养 | 第37页 |
| 2.2.3 ADSCs细胞增殖能力检测 | 第37-38页 |
| 2.2.4 ADSCs成脂诱导及油红O染色 | 第38页 |
| 2.2.5 ADSCs的成骨诱导及茜素红染色 | 第38-39页 |
| 3 结果 | 第39-43页 |
| 3.1 ADSCs的形态学观察 | 第39-40页 |
| 3.2 ADSCs增殖能力检测及生长曲线 | 第40页 |
| 3.3 ADSCs的成脂诱导和油红O染色结果 | 第40-41页 |
| 3.4 ADSCs成骨诱导分化和茜素红染色结果 | 第41-43页 |
| 4 讨论 | 第43-44页 |
| 5 结论 | 第44-45页 |
| 第三部分 DAT可注射水凝胶支架的构建与检测 | 第45-59页 |
| 1 前言 | 第45-46页 |
| 2 材料与方法 | 第46-50页 |
| 2.1 实验材料 | 第46页 |
| 2.1.1 材料来源 | 第46页 |
| 2.1.2 常用试剂 | 第46页 |
| 2.1.3 常用仪器 | 第46页 |
| 2.1.4 实验动物 | 第46页 |
| 2.2 实验方法 | 第46-50页 |
| 2.2.1 DAT水凝胶的制备 | 第46-47页 |
| 2.2.2 SEM超微结构观察 | 第47页 |
| 2.2.3 体外凝胶化观察 | 第47页 |
| 2.2.4 鼠尾I性胶原蛋白水凝胶的制备过程 | 第47-48页 |
| 2.2.5 浊度动力学检测 | 第48页 |
| 2.2.6 SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第48页 |
| 2.2.7 体内凝胶化 | 第48页 |
| 2.2.8 统计学分析 | 第48-50页 |
| 3 结果 | 第50-56页 |
| 3.1 DAT水凝胶制备流程及大体形态观察 | 第50-51页 |
| 3.2 DAT水凝胶的超微结构观察 | 第51页 |
| 3.3 体外凝胶化过程观察 | 第51-52页 |
| 3.4 鼠尾I型胶原水凝胶的制备 | 第52-53页 |
| 3.5 SDS-PAGE电泳结果 | 第53-54页 |
| 3.6 凝胶的浊度动力学检测结果 | 第54页 |
| 3.7 DAT水凝胶大鼠体内凝胶化观察 | 第54-56页 |
| 4 讨论 | 第56-58页 |
| 5 结论 | 第58-59页 |
| 第四部分 DAT水凝胶体内外生物相容性检测 | 第59-74页 |
| 1 前言 | 第59-61页 |
| 2 材料与方法 | 第61-64页 |
| 2.1 实验材料 | 第61页 |
| 2.1.1 主要试剂 | 第61页 |
| 2.1.2 主要仪器 | 第61页 |
| 2.1.3 实验动物 | 第61页 |
| 2.2 实验方法 | 第61-64页 |
| 2.2.1 种子细胞及支架的准备 | 第61页 |
| 2.2.2 DAT水凝胶体外细胞增殖能力检测 | 第61-62页 |
| 2.2.3 DAT水凝胶的细胞毒性检测 | 第62页 |
| 2.2.4 DAT水凝胶支架体外诱导ADSCs成脂 | 第62页 |
| 2.2.5 DAT水凝胶大鼠体内相容性检测 | 第62-63页 |
| 2.2.6 统计学分析 | 第63-64页 |
| 3 结果 | 第64-70页 |
| 3.1 ADSCs的增殖能力检测 | 第64页 |
| 3.2 DAT水凝胶的细胞毒性检测 | 第64-65页 |
| 3.3 ADSCs接种后的诱导成脂检测 | 第65-67页 |
| 3.4 DAT水凝胶大鼠体内植入后组织相容性检测 | 第67-70页 |
| 3.4.1 大体情况及外观 | 第67-68页 |
| 3.4.2 组织学检测 | 第68-70页 |
| 4 讨论 | 第70-73页 |
| 5 结论 | 第73-74页 |
| 本研究创新性的自我评价 | 第74-75页 |
| 参考文献 | 第75-81页 |
| 文献综述 | 第81-91页 |
| 参考文献 | 第87-91页 |
| 攻读学位期间取得的研究成果 | 第91-92页 |
| 致谢 | 第92-93页 |
| 个人简介 | 第93页 |
