摘要 | 第5-6页 |
Abstract | 第6页 |
第一章 绪论 | 第13-23页 |
1.1 单核细胞和单核细胞的分化 | 第13-15页 |
1.1.1 单核细胞 | 第13-14页 |
1.1.2 单核细胞的分化 | 第14-15页 |
1.2 补体系统 | 第15-18页 |
1.2.1 概述 | 第15页 |
1.2.2 经典激活途径与C1 | 第15-16页 |
1.2.3 凝集素途径 | 第16-17页 |
1.2.4 替代性激活途经 | 第17页 |
1.2.5 三种激活途径的比较 | 第17-18页 |
1.3 补体系统与巨噬细胞 | 第18-19页 |
1.4 C1抑制物 | 第19-20页 |
1.5 巨噬细胞与TLR4信号通路 | 第20-21页 |
1.6 巨噬细胞与表观遗传的DNA甲基转移酶 | 第21-22页 |
1.7 本实验研究目的及意义 | 第22-23页 |
第二章 材料与方法 | 第23-31页 |
2.1 实验材料、试剂 | 第23-26页 |
2.1.1 实验材料 | 第23页 |
2.1.2 主要仪器设备 | 第23-24页 |
2.1.3 主要试剂 | 第24页 |
2.1.4 试剂配制 | 第24-26页 |
2.2 实验方法 | 第26-31页 |
2.2.1 细胞的分离 | 第26页 |
2.2.2 单核细胞的传代 | 第26-27页 |
2.2.3 单核细胞的冻存 | 第27页 |
2.2.4 细胞的复苏 | 第27-28页 |
2.2.5 细胞的诱导 | 第28页 |
2.2.6 流式细胞仪检测 | 第28页 |
2.2.7 提取总RNA和RT-PCR | 第28页 |
2.2.8 细胞杀菌实验 | 第28-29页 |
2.2.9 细胞对菌的吞噬试验 | 第29页 |
2.2.10 全基因组DNA甲基化分析 | 第29页 |
2.2.11 DNA甲基转移酶活性测定 | 第29页 |
2.2.12 Western Blot | 第29-30页 |
2.2.13 Sp3活性的测定 | 第30页 |
2.2.14 数据分析 | 第30-31页 |
第三章 结果与分析 | 第31-44页 |
3.1 C1INH对M和M2极化表型的作用 | 第31-34页 |
3.2 C1INH调节M1和M2中趋化因子和细胞因子的分泌 | 第34-35页 |
3.3 C1INH提高极化巨噬细胞杀菌活性和对菌的吞噬功能 | 第35-37页 |
3.4 C1INH抑制极化巨噬细胞CD14-TLR4介导的信号转导 | 第37-38页 |
3.5 C1INH增加了全基因组DNA甲基化和M2中DNMTs活性 | 第38-42页 |
3.6 C1INH通过转录因子Sp3增强DNMT3b的活性 | 第42-44页 |
第四章 总结与讨论 | 第44-48页 |
参考文献 | 第48-54页 |
附录 | 第54-55页 |
致谢 | 第55页 |