| 摘要 | 第8-11页 |
| Abstract | 第11-14页 |
| 第1章 文献综述 | 第15-25页 |
| 1.1 轴突导向途径 | 第15页 |
| 1.2 Netrins家族介导的神经导向途径的研究进展 | 第15-18页 |
| 1.2.1 Netrin-1结构和功能简介 | 第16页 |
| 1.2.2 Netrin-1与跨膜受体DCC发生吸引作用 | 第16-17页 |
| 1.2.3 Netrin-1与跨膜受体DCC和UNC 5发生排斥作用 | 第17-18页 |
| 1.3 肌动蛋白细胞骨架的调节 | 第18页 |
| 1.4 周围神经系统结构和组成 | 第18-19页 |
| 1.5 周围神经系统缺损和修复 | 第19-23页 |
| 1.5.1 周围神经系统缺损原因及类型 | 第19页 |
| 1.5.2 周围神经系统缺损后的修复 | 第19-23页 |
| 1.6 周围神经系统的微环境和相关细胞因子 | 第23-25页 |
| 1.6.1 雪旺氏细胞 | 第23-24页 |
| 1.6.2 成纤维细胞 | 第24页 |
| 1.6.3 海藻酸盐 | 第24-25页 |
| 第2章 引言 | 第25-29页 |
| 2.1 研究背景 | 第25-26页 |
| 2.2 研究内容 | 第26-27页 |
| 2.3 本研究的创新点 | 第27-29页 |
| 第3章 雪旺氏细胞的培养与鉴定 | 第29-35页 |
| 3.1 实验材料 | 第29-30页 |
| 3.1.1 实验动物 | 第29页 |
| 3.1.2 实验试剂 | 第29-30页 |
| 3.1.3 实验仪器 | 第30页 |
| 3.2 实验方法 | 第30-32页 |
| 3.2.1 雪旺氏细胞的原代培养 | 第30-31页 |
| 3.2.2 成纤维细胞原代培养 | 第31页 |
| 3.2.3 雪旺细胞、成纤维细胞的传代培养 | 第31页 |
| 3.2.4 细胞爬片与鉴定 | 第31-32页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第32-33页 |
| 3.4 小结 | 第33-35页 |
| 第4章 人工神经的制备和移植 | 第35-41页 |
| 4.1 实验材料 | 第35页 |
| 4.1.1 实验动物 | 第35页 |
| 4.1.2 实验试剂 | 第35页 |
| 4.1.3 实验仪器 | 第35页 |
| 4.2 实验方法 | 第35-38页 |
| 4.2.1 纤维素-聚乳酸神经导管的制备 | 第35-36页 |
| 4.2.2 海藻酸钙颗粒的制备 | 第36页 |
| 4.2.3 雪旺氏细胞海藻酸钙水凝胶的准备 | 第36页 |
| 4.2.4 移植体的准备 | 第36页 |
| 4.2.5 移植体的移植 | 第36-38页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第38-39页 |
| 4.4 小结 | 第39-41页 |
| 第5章 人工神经修复效果和形态学评价 | 第41-61页 |
| 5.1 实验材料 | 第41-42页 |
| 5.1.1 实验动物 | 第41页 |
| 5.1.2 实验试剂 | 第41-42页 |
| 5.1.3 实验仪器 | 第42页 |
| 5.2 实验方法 | 第42-44页 |
| 5.2.1 形态学观察 | 第42-44页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第44-59页 |
| 5.3.1 神经移植 | 第44-45页 |
| 5.3.2 形态学观察 | 第45-59页 |
| 5.4 小结 | 第59-61页 |
| 第6章 Netrin-1信号通路中的分子表达 | 第61-73页 |
| 6.1 实验材料 | 第61-62页 |
| 6.1.1 实验试剂 | 第61页 |
| 6.1.2 实验仪器 | 第61-62页 |
| 6.1.3 引物序列 | 第62页 |
| 6.2 实验方法 | 第62-66页 |
| 6.2.1 引物的设计 | 第63页 |
| 6.2.2 DNA的纯化回收 | 第63-64页 |
| 6.2.3 标准曲线的制作 | 第64页 |
| 6.2.4 RT-PCR | 第64-66页 |
| 6.2.5 统计学分析 | 第66页 |
| 6.3 结果 | 第66-70页 |
| 6.3.1 标准曲线 | 第66-67页 |
| 6.3.2 基因的表达量 | 第67-70页 |
| 6.4 讨论 | 第70-72页 |
| 6.5 小结 | 第72-73页 |
| 结论 | 第73-75页 |
| 参考文献 | 第75-83页 |
| 致谢 | 第83-85页 |
| 硕士研究生期间科研成果 | 第85页 |
