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利用T-DNA插入突变体研究逆境胁迫下AtSIS的作用

摘要第7-8页
Abstract第8页
第1章 绪论第9-16页
    1.1 逆境胁迫及植物抗逆分子机制第9-12页
        1.1.1 盐胁迫对植物的影响第9-10页
        1.1.2 干旱胁迫对植物的影响第10页
        1.1.3 植物对渗透胁迫的应答第10-11页
        1.1.4 植物对氧化胁迫的应答第11页
        1.1.5 非生物胁迫应答的转录水平调节第11-12页
    1.2 研究基因功能的主要策略第12-13页
        1.2.1 生物信息学在基因功能中的应用第12-13页
        1.2.2 T-DNA插入突变体在基因功能中的应用第13页
    1.3 固有无序蛋白质第13-14页
    1.4 本研究的目的和意义第14-15页
    1.5 本研究的技术路线第15-16页
第2章 AtSIS生物信息学分析第16-23页
    2.1 实验方法第16页
    2.2 结果分析第16-22页
        2.2.1 无序分析第17页
        2.2.2 AtSIS蛋白的氨基酸组成第17-18页
        2.2.3 亲水性分析第18-19页
        2.2.4 AtSIS蛋白质HCA值第19-20页
        2.2.5 二级结构及蛋白结合位点的预测第20-21页
        2.2.6 磷酸化修饰的预测第21-22页
    2.3 讨论第22页
    2.4 本章小结第22-23页
第3章 AtSIS基因T-DNA插入突变体基因型分析第23-30页
    3.1 材料方法第23-24页
        3.1.1 实验材料第23页
        3.1.2 实验方法第23-24页
    3.2 结果分析第24-28页
        3.2.1 T-DNA插入位点分析第24-25页
        3.2.2 AtSIS T-DNA插入突变体类型第25-28页
    3.3 讨论第28-29页
    3.4 本章小结第29-30页
第4章 AtSIS植物表达载体的构建第30-43页
    4.1 材料方法第30-31页
        4.1.1 植物材料第30页
        4.1.2 载体和菌株第30页
        4.1.3 培养基第30页
        4.1.4 酶、抗生素第30-31页
    4.2 实验方法第31-36页
        4.2.1 基因克隆第31页
        4.2.2 克隆载体的构建第31-33页
        4.2.3 植物表达载体的构建第33-35页
        4.2.4 农杆菌转化法转拟南芥第35-36页
    4.3 结果分析第36-42页
        4.3.1 AtSIS基因全长CDS的PCR扩增第36-37页
        4.3.2 pMD18-AtSIS菌株的筛选第37页
        4.3.3 测序结果和分析第37页
        4.3.4 表达载体双酶切第37页
        4.3.5 pCAMBIA1303-AtSIS表达载体的酶切鉴定第37-38页
        4.3.6 菌液PCR鉴定第38页
        4.3.7 转基因拟南芥的筛选第38页
        4.3.8 转基因拟南芥的表型鉴定第38页
        4.3.9 转基因拟南芥的分子鉴定第38-42页
    4.4 讨论第42页
    4.5 本章小结第42-43页
第5章 AtSIS对非生物胁迫的应答第43-56页
    5.1 实验材料第43页
    5.2 实验方法第43-46页
        5.2.1 表型实验第43-44页
        5.2.2 cDNA的合成第44-45页
        5.2.3 q RT-PCR第45-46页
    5.3 结果分析第46-54页
        5.3.1 拟南芥Col-0 野生型和AtSIS基因突变体的芽期胁迫表型第46-48页
        5.3.2 拟南芥Col-0 野生型和AtSIS基因突变体的苗期胁迫表型第48页
        5.3.3 拟南芥Col-0 野生型和AtSIS基因突变体的花期胁迫表型第48-49页
        5.3.4 AtSIS共表达基因的预测第49-51页
        5.3.5 AtSIS及共表达基因qRT-PCR结果第51-54页
    5.4 讨论第54-55页
    5.5 本章小结第55-56页
结论第56-57页
参考文献第57-62页
攻读硕士学位期间发表学术论文第62-63页
致谢第63页

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