| 中文摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-7页 |
| 第一章 前言 | 第13-23页 |
| 1.1 包虫病 | 第13-16页 |
| 1.1.1 囊型包虫病 | 第13-15页 |
| 1.1.2 泡型包虫病 | 第15-16页 |
| 1.2 包虫病的治疗 | 第16-18页 |
| 1.2.1 外科手术治疗 | 第16页 |
| 1.2.2 西药治疗 | 第16-17页 |
| 1.2.3 中药治疗 | 第17-18页 |
| 1.2.4 中西药联合治疗 | 第18页 |
| 1.3 计算机模拟分子对接技术 | 第18-20页 |
| 1.3.1 分子对接技术 | 第18-19页 |
| 1.3.2 分子对接技术原理 | 第19-20页 |
| 1.3.3 计算机模拟分子对接技术在中药筛选中的应用 | 第20页 |
| 1.4 微管蛋白 | 第20-22页 |
| 1.4.1 微管蛋白的结构和作用 | 第20-21页 |
| 1.4.2 药物的靶蛋白——微管蛋白 | 第21页 |
| 1.4.3 抗寄生虫药苯并咪唑类药物与微管蛋白 | 第21-22页 |
| 1.5 研究目的与意义 | 第22-23页 |
| 第二章 计算机模拟分子对接技术对抗包虫药物的筛选 | 第23-32页 |
| 2.1 实验材料 | 第23页 |
| 2.2 实验方法 | 第23-26页 |
| 2.2.1 细粒棘球绦虫β-tubulin计算机同源建模 | 第23-25页 |
| 2.2.2 并苯咪唑类药物与细粒棘球绦虫β-Tublin蛋白分子对接的验证.. | 第25-26页 |
| 2.2.3 中药单体与细粒棘球绦虫β-Tublin蛋白分子对接的筛选 | 第26页 |
| 2.3 实验结果 | 第26-30页 |
| 2.3.1 细粒棘球绦虫β-tubulin三维结构模型 | 第26-27页 |
| 2.3.2 计算机模拟验证苯并咪唑类药物与细粒棘球绦虫β-tubulin分子对接 | 第27页 |
| 2.3.3 计算机模拟对接示意图 | 第27-28页 |
| 2.3.4 计算机模拟筛选中药单体库与细粒棘球绦虫β-tubulin分子对接. | 第28-30页 |
| 2.4 讨论 | 第30-32页 |
| 2.4.1 细粒棘球绦虫β-tubulin计算机同源建模 | 第30-31页 |
| 2.4.2 苯并咪唑药物与细粒棘球绦虫β-tubulin模型分子对接的验证 | 第31页 |
| 2.4.3 通过分子对接技术筛选与β-tubulin结合的中药单体 | 第31-32页 |
| 第三章 分子对接验证苯并咪唑类药物与筛选中药单体体外抗原头蚴的研究 | 第32-63页 |
| 3.1 实验材料 | 第32-36页 |
| 3.1.1 细粒棘球绦虫原头蚴 | 第32页 |
| 3.1.2 阿苯达唑亚砜对映体拆分试剂 | 第32-33页 |
| 3.1.3 药物配置 | 第33页 |
| 3.1.4 主要试剂 | 第33-34页 |
| 3.1.5 主要仪器及设备 | 第34页 |
| 3.1.6 主要试剂的配制 | 第34-36页 |
| 3.2 实验方法 | 第36-42页 |
| 3.2.1 阿苯达唑亚砜对映体拆分 | 第36-37页 |
| 3.2.2 细粒棘球蚴原头节体外培养 | 第37-38页 |
| 3.2.3 碱性磷酸酶的检测 | 第38页 |
| 3.2.4 Westernbloting检测原头节β-TublinmRNA的表达 | 第38-40页 |
| 3.2.5 qPCR检测原头节β-TublinmRNA的含量 | 第40-42页 |
| 3.2.6 数据处理及实验结果统计学分析 | 第42页 |
| 3.3 实验结果 | 第42-61页 |
| 3.3.1 阿苯达唑亚砜拆分 | 第42-43页 |
| 3.3.2 苯并咪唑类药物体外抗包虫的观察 | 第43-48页 |
| 3.3.3 苯并咪唑类药物对原头节的抑制率 | 第48-49页 |
| 3.3.4 并苯咪唑类药物对碱性磷酸酶的影响 | 第49-50页 |
| 3.3.5 并苯咪唑类药物对原头节β-Tublin蛋白表达的影响 | 第50-51页 |
| 3.3.6 并苯咪唑类药物对包虫β-TublinmRNA表达的影响 | 第51-52页 |
| 3.3.7 中药单体体外抗包虫的观察 | 第52-57页 |
| 3.3.8 中药单体对原头节的抑制率 | 第57-58页 |
| 3.3.9 中药单体对碱性磷酸酶的影响 | 第58-59页 |
| 3.3.10 中药单体对包虫β-Tublin蛋白表达的影响 | 第59-60页 |
| 3.3.11 中药单体对包虫β-TublinmRNA表达的影响 | 第60-61页 |
| 3.4 讨论 | 第61-63页 |
| 3.4.1 体外药物处理原头节的实验研究 | 第61-62页 |
| 3.4.2 分子对接技术验证苯并咪唑类药物体外抗包虫的实验研究 | 第62-63页 |
| 3.4.3 分子对接技术筛选中药单体体外抗包虫的实验研究 | 第63页 |
| 第四章 阿苯达唑亚砜与中药单体的细胞毒性研究 | 第63-93页 |
| 4.1 实验材料 | 第63-66页 |
| 4.1.1 HepG2细胞 | 第63-64页 |
| 4.1.2 药物配置 | 第64页 |
| 4.1.3 主要试剂 | 第64-65页 |
| 4.1.4 主要仪器及设备 | 第65页 |
| 4.1.5 主要试剂的配制 | 第65-66页 |
| 4.2 实验方法 | 第66-72页 |
| 4.2.1 细胞培养 | 第66页 |
| 4.2.2 实验分组 | 第66页 |
| 4.2.3 HepG2细胞增殖的检测 | 第66页 |
| 4.2.4 HepG2细胞周期影响的检测 | 第66-67页 |
| 4.2.5 HepG2细胞早期凋亡的检测 | 第67页 |
| 4.2.6 Westernblot检测HepG2细胞的凋亡相关蛋白 | 第67-70页 |
| 4.2.7 qPCR检测HepG2细胞凋亡相关蛋白mRNA的含量 | 第70-71页 |
| 4.2.8 细胞免疫荧光检测HepG2细胞的微管形成 | 第71-72页 |
| 4.2.10 数据处理及实验结果统计学分析 | 第72页 |
| 4.3 实验结果 | 第72-89页 |
| 4.3.1 阿苯达唑亚砜及其对映体对HepG2细胞增殖的影响 | 第72-74页 |
| 4.3.2 阿苯达唑亚砜及其对映体对HepG2形态及细胞凋亡的影响 | 第74-75页 |
| 4.3.3 阿苯达唑亚砜及其对映体对HepG2细胞周期的影响 | 第75页 |
| 4.3.4 阿苯达唑亚砜及其对映体对HepG2细胞凋亡的影响 | 第75-76页 |
| 4.3.5 阿苯达唑亚砜及其对映体对HepG2细胞凋亡相关蛋白表达的影响 | 第76-77页 |
| 4.3.6 阿苯达唑亚砜及对映体对HepG2细胞凋亡相关蛋白mRNA表达的影响 | 第77-79页 |
| 4.3.7 阿苯达唑亚砜及其对映体对HepG2细胞微管的影响 | 第79-80页 |
| 4.3.8 中药单体PFM和NIP对HepG2细胞增殖的影响 | 第80-82页 |
| 4.3.9 中药单体PFM和NIP对HepG2细胞凋亡及其形态的影响 | 第82-83页 |
| 4.3.10 中药单体PFM与NIP对HepG2细胞周期的影响 | 第83-84页 |
| 4.3.11 中药单体PFM与NIP对HepG2细胞凋亡的影响 | 第84-85页 |
| 4.3.12 中药单体PFM与NIP对HepG2细胞凋亡相关蛋白的影响 | 第85-86页 |
| 4.3.13 中药单体PFM和NIP对HepG2细胞凋亡相关蛋白mRNA的影响 | 第86-88页 |
| 4.3.14 中药单体PFM与NIP对HepG2细胞微管的影响 | 第88-89页 |
| 4.4 讨论 | 第89-93页 |
| 4.4.1 细胞毒性实验 | 第89-90页 |
| 4.4.2 阿苯达唑亚砜及其对映体细胞毒性实验 | 第90-91页 |
| 4.4.3 中药单体PFM、NIP细胞毒性实验 | 第91-93页 |
| 第五章 结论 | 第93-95页 |
| 5.1 主要结论 | 第93页 |
| 5.2 研究展望 | 第93-95页 |
| 参考文献 | 第95-100页 |
| 在校期间的研究成果 | 第100-101页 |
| 缩略词表 | 第101-102页 |
| 致谢 | 第102页 |
