几种手性药物的高效液相色谱法拆分及大鼠体内药动学研究
| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 目录 | 第9-13页 |
| 第一章 前言 | 第13-26页 |
| 1 手性药物的研究概况 | 第13-17页 |
| 1.1 手性与手性药物 | 第13-14页 |
| 1.2 手性药物的药动学立体选择性 | 第14-16页 |
| 1.3 手性药物的生物活性及分离意义 | 第16-17页 |
| 2 手性高效液相色谱法 | 第17-21页 |
| 2.1 手性固定相法 | 第18-21页 |
| 2.2 手性流动相添加剂法 | 第21页 |
| 2.3 手性衍生化法 | 第21页 |
| 3 研究目的和内容 | 第21-23页 |
| 参考文献 | 第23-26页 |
| 第二章 吡格列酮的对映体拆分及含量测定 | 第26-40页 |
| 1 仪器与材料 | 第26-27页 |
| 1.1 仪器 | 第26页 |
| 1.2 试剂和样品 | 第26-27页 |
| 2 实验方法 | 第27-33页 |
| 2.1 溶液的制备 | 第27页 |
| 2.2 最佳色谱分离条件 | 第27-28页 |
| 2.3 方法学考察 | 第28-32页 |
| 2.4 片剂中对映体含量的测定 | 第32-33页 |
| 3 结果与讨论 | 第33-37页 |
| 3.1 醇类改性剂的种类及比例对分离的影响 | 第33-34页 |
| 3.2 酸碱添加剂对分离的影响 | 第34页 |
| 3.3 柱温对分离的影响 | 第34-35页 |
| 3.4 流速对分离的影响 | 第35-36页 |
| 3.5 手性拆分机理的探讨 | 第36-37页 |
| 4 小结 | 第37-38页 |
| 参考文献 | 第38-40页 |
| 第三章 大鼠血浆中吡格列酮对映体的药物动力学研究 | 第40-58页 |
| 1 实验仪器与材料 | 第41-42页 |
| 1.1 仪器 | 第41页 |
| 1.2 试剂与样品 | 第41页 |
| 1.3 实验动物 | 第41-42页 |
| 2 大鼠血浆中吡格列酮对映体的分析方法的建立 | 第42-48页 |
| 2.1 溶液的配制 | 第42页 |
| 2.2 手性分离色谱条件 | 第42-43页 |
| 2.3 血浆样品的前处理方法 | 第43页 |
| 2.4 分析方法的确认 | 第43-48页 |
| 3 吡格列酮在大鼠体内的立体选择性药物动力学研究 | 第48-54页 |
| 3.1 给药方案和血浆样品的采集 | 第48页 |
| 3.2 吡格列酮对映体的立体选择性药物动力学结果 | 第48-52页 |
| 3.3 讨论 | 第52-54页 |
| 4 小结 | 第54-56页 |
| 参考文献 | 第56-58页 |
| 第四章 二硫代氨基甲酸酯类化合物的拆分及活性研究 | 第58-76页 |
| 1 二硫代氨基甲酸酯类手性化合物的拆分研究 | 第59-64页 |
| 1.1 仪器与材料 | 第59页 |
| 1.2 实验方法 | 第59-60页 |
| 1.3 结果与讨论 | 第60-64页 |
| 2 体外抗肿瘤活性差异研究 | 第64-69页 |
| 2.1 仪器与材料 | 第64-65页 |
| 2.2 实验方法 | 第65-67页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第67-69页 |
| 3 体外抗菌活性差异研究 | 第69-73页 |
| 3.1 材料与仪器 | 第69-70页 |
| 3.2 实验方法 | 第70-71页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第71-73页 |
| 4 小结 | 第73-74页 |
| 参考文献 | 第74-76页 |
| 第五章 丁烯内酯及新型吲哚类化合物的手性拆分 | 第76-92页 |
| 1 材料与仪器 | 第78页 |
| 1.1 仪器 | 第78页 |
| 1.2 试剂与样品 | 第78页 |
| 2 实验方法 | 第78-79页 |
| 2.1 色谱条件 | 第78页 |
| 2.2 样品溶液的制备 | 第78-79页 |
| 3 结果与讨论 | 第79-89页 |
| 3.1 醇类改性剂对丁烯内酯类化合物拆分的影响 | 第79-80页 |
| 3.2 乙醇含量对新型吲哚类化合物拆分的影响 | 第80-82页 |
| 3.3 化合物结构对分离的影响 | 第82-83页 |
| 3.4 柱温对分离的影响 | 第83-85页 |
| 3.5 流速对分离的影响 | 第85-89页 |
| 4 小结 | 第89-90页 |
| 参考文献 | 第90-92页 |
| 个人简历 | 第92页 |
| 攻读硕士学位期间的科研成果 | 第92-93页 |
| 致谢 | 第93页 |
