摘要 | 第5-7页 |
ABSTRACT | 第7-8页 |
第一章 文献综述 | 第11-20页 |
1.1 植物多倍体育种研究进展 | 第11-12页 |
1.1.1 多倍体概述 | 第11页 |
1.1.2 多倍体植物的特征 | 第11页 |
1.1.3 多倍体产生的方式 | 第11-12页 |
1.1.3.1 自然方式 | 第11-12页 |
1.1.3.2 人工诱导 | 第12页 |
1.1.4 桑树多倍体研究现状 | 第12页 |
1.2 流式细胞仪在植物倍性鉴定中的应用 | 第12-16页 |
1.2.1 流式细胞仪概述 | 第12-15页 |
1.2.2 流式细胞仪的工作原理 | 第15页 |
1.2.3 流式细胞术在植物倍性鉴定中的应用 | 第15-16页 |
1.3 植物抗旱机理的研究进展 | 第16-18页 |
1.3.1 植物光合生理 | 第16-17页 |
1.3.2 气孔和非气孔限制 | 第17页 |
1.3.3 植物细胞膜 | 第17页 |
1.3.3.1 细胞膜膜脂的流动性 | 第17页 |
1.3.3.2 细胞膜的透性 | 第17页 |
1.3.4 抗氧化酶系统 | 第17-18页 |
1.3.5 有机渗透调节物质 | 第18页 |
1.4 PEG 的渗透调节机制 | 第18-19页 |
1.4.1 PEG 简介及应用 | 第18-19页 |
1.4.2 不同分子量 PEG 的选择 | 第19页 |
1.5 本研究的目的、意义及主要内容 | 第19-20页 |
第二章 桑树同源多倍体品种在 PEG 模拟干旱胁迫下的相关生理指标变化 | 第20-36页 |
2.1 新一之濑桑树同源多倍体组培苗的培育 | 第20-22页 |
2.1.1 材料准备 | 第20页 |
2.1.1.1 试验桑树品种 | 第20页 |
2.1.1.2 试验试剂的配置 | 第20页 |
2.1.1.3 试验溶液 | 第20页 |
2.1.1.4 试验仪器 | 第20页 |
2.1.2 试验方法 | 第20-21页 |
2.1.2.1 培养基的配置 | 第20页 |
2.1.2.2 组织培养的准备 | 第20-21页 |
2.1.2.3 组织培养的方法 | 第21页 |
2.1.3 结果与分析 | 第21页 |
2.1.3.1 继代培养苗的生长状况分析 | 第21页 |
2.1.3.2 壮苗培养苗的生长状况分析 | 第21页 |
2.1.3.3 生根苗的生长状况分析 | 第21页 |
2.1.3.4 驯化苗的生长状况分析 | 第21页 |
2.1.4 讨论 | 第21-22页 |
2.1.5 小结 | 第22页 |
2.2 流式细胞仪鉴定桑树组培苗倍性 | 第22-24页 |
2.2.1 材料 | 第22-23页 |
2.2.1.1 试验材料 | 第22页 |
2.2.1.2 试验仪器 | 第22-23页 |
2.2.2 试验方法 | 第23页 |
2.2.3 结果与分析 | 第23页 |
2.2.4 讨论 | 第23-24页 |
2.2.5 小结 | 第24页 |
2.3 桑树同源多倍体品种在 PEG 模拟干旱胁迫下的相关生理指标变化 | 第24-36页 |
2.3.1 材料 | 第24-26页 |
2.3.1.1 试验材料 | 第24页 |
2.3.1.2 试验试剂 | 第24-25页 |
2.3.1.3 试验仪器 | 第25-26页 |
2.3.2 试验方法 | 第26页 |
2.3.2.1 材料培育 | 第26页 |
2.3.2.2 试验设计 | 第26页 |
2.3.2.3 干旱胁迫下桑树生理指标的测定方法 | 第26页 |
2.3.2.4 统计分析 | 第26页 |
2.3.3 结果与分析 | 第26-32页 |
2.3.3.1 干旱胁迫下桑树形态变化 | 第26-28页 |
2.3.3.2 干旱胁迫对桑树多倍体叶片相对含水量的影响 | 第28页 |
2.3.3.3 叶片膜透性及膜脂质过氧化的变化 | 第28-30页 |
2.3.3.4 超氧化物歧化酶活性的变化 | 第30页 |
2.3.3.5 叶片中脯氨酸含量的变化 | 第30-31页 |
2.3.3.6 干旱胁迫对桑树多倍体叶片中可溶性糖含量的影响 | 第31-32页 |
2.3.4 结论与讨论 | 第32-35页 |
2.3.5 小结 | 第35-36页 |
结论 | 第36-37页 |
参考文献 | 第37-42页 |
附录一 | 第42-44页 |
附录二 | 第44-49页 |
缩略词 | 第49-50页 |
致谢 | 第50-51页 |
作者简介 | 第51页 |