| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 英文缩写一览表 | 第12-14页 |
| 氨基酸缩写表 | 第14-15页 |
| 第1章 引言 | 第15-22页 |
| 1.1 研究背景 | 第15-20页 |
| 1.1.1 肿瘤免疫治疗 | 第15-16页 |
| 1.1.2 抗肿瘤多肽疫苗 | 第16-17页 |
| 1.1.3 癌睾抗原 | 第17-18页 |
| 1.1.4 磷酸化的应用 | 第18-20页 |
| 1.2 研究目的及意义 | 第20页 |
| 1.3 研究内容与方法 | 第20-22页 |
| 第2章 癌/睾丸抗原 CTNNA2 表位的预测及修饰 | 第22-27页 |
| 2.1 材料 | 第22-23页 |
| 2.2 方法 | 第23-24页 |
| 2.2.1 BIMAS 预测 | 第23页 |
| 2.2.2 NetCTL1.2 预测 | 第23-24页 |
| 2.2.3 SYFPEITHI 预测 | 第24页 |
| 2.2.4 磷酸化尝试 | 第24页 |
| 2.3 结果 | 第24-25页 |
| 2.4 讨论 | 第25-27页 |
| 第3章 CTNNA2 表位的合成、纯化及鉴定 | 第27-41页 |
| 3.1 材料 | 第27-29页 |
| 3.1.1 主要试剂 | 第27-28页 |
| 3.1.2 主要仪器 | 第28页 |
| 3.1.3 待合成肽汇总 | 第28-29页 |
| 3.2 方法 | 第29-32页 |
| 3.2.1 CTNNA2 备选肽的合成 | 第29-31页 |
| 3.2.2 多肽的 RP-HPLC 分离纯化 | 第31-32页 |
| 3.2.3 质谱分析 | 第32页 |
| 3.3 结果 | 第32-39页 |
| 3.4 讨论 | 第39-41页 |
| 第4章 CTNNA2 抗原的 CTL 表位鉴定 | 第41-69页 |
| 4.1 材料 | 第41-44页 |
| 4.1.1 主要试剂 | 第41-42页 |
| 4.1.2 主要仪器 | 第42-43页 |
| 4.1.3 实验所需试剂的配制 | 第43-44页 |
| 4.1.4 细胞系及血液样本 | 第44页 |
| 4.2 方法 | 第44-54页 |
| 4.2.1 实验所用肿瘤细胞系的 HLA 型别情况 | 第44页 |
| 4.2.2 HLA-A2~+健康供者的筛选 | 第44页 |
| 4.2.3 RT-PCR 技术检测 CTNNA2 在肿瘤细胞系中的表达 | 第44-48页 |
| 4.2.4 T2 细胞亲和力实验 | 第48-49页 |
| 4.2.5 肽/MHC 复合物的稳定性分析 | 第49-50页 |
| 4.2.6 CD8~+T 细胞体外诱导及检测 | 第50-54页 |
| 4.3 结果 | 第54-65页 |
| 4.3.1 实验细胞系的分型结果 | 第54-55页 |
| 4.3.2 HLA-A2~+健康者的筛选结果 | 第55页 |
| 4.3.3 各肿瘤细胞系表达 CTNNA2 的结果 | 第55页 |
| 4.3.4 CTNNA2 抗原肽/MHC 结合力结果 | 第55-56页 |
| 4.3.5 肽-MHC 的稳定性结果 | 第56-57页 |
| 4.3.6 CTNNA2 特异性 CTL 分泌 IFN-γ的检测结果 | 第57-62页 |
| 4.3.7 CTNNA2 特异性 CTL 的杀伤结果 | 第62-65页 |
| 4.4 讨论 | 第65-69页 |
| 全文讨论 | 第69-72页 |
| 全文结论 | 第72-73页 |
| 参考文献 | 第73-78页 |
| 致谢 | 第78-79页 |
| 硕士期间发表论文、专利目录及研究成果 | 第79页 |
