| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 第1章 综述 | 第10-34页 |
| 1.1 龟类研究概述 | 第10-19页 |
| 1.1.1 巴西红耳龟研究概述 | 第10-11页 |
| 1.1.2 西红耳龟寿命研究 | 第11-12页 |
| 1.1.3 西红耳龟繁殖与发育学研究 | 第12-13页 |
| 1.1.4 西红耳龟形态组织学与解剖学研究 | 第13-15页 |
| 1.1.5 巴西龟血液学研究概述 | 第15-19页 |
| 1.2 动物低温缺氧研究 | 第19-28页 |
| 1.2.1 动物低温应激研究现状概述 | 第19-21页 |
| 1.2.2 低温对机体代谢水平的影响 | 第21-22页 |
| 1.2.3 低温对基因表达作用的影响 | 第22页 |
| 1.2.4 在低温环境中动物自我保护策略 | 第22-24页 |
| 1.2.5 动物抗缺氧研究 | 第24-25页 |
| 1.2.6 动物抗缺氧应对策略研究 | 第25-28页 |
| 1.3 高效液相色谱学概述 | 第28-31页 |
| 1.4 本文的研究思路 | 第31-34页 |
| 第2章 巴西红耳龟低温潜水能量代谢的研究及其与大鼠和人类红细胞ATP值的比较 | 第34-70页 |
| 2.1 引言 | 第34-36页 |
| 2.2 材料与方法 | 第36-45页 |
| 2.2.1 实验材料 | 第36-37页 |
| 2.2.2 实验对象 | 第37-38页 |
| 2.2.3 实验仪器 | 第38页 |
| 2.2.4 实验方法 | 第38-45页 |
| 2.3 实验结果 | 第45-64页 |
| 2.3.1 巴西龟血液样品制备的优化 | 第45-46页 |
| 2.3.2 液相色谱同时测定Cr、CP、ADP、ATP的方法研究 | 第46-47页 |
| 2.3.3 液相色谱测定ATP与Jabs荧光化学发光法测定巴西龟红细胞ATP对比 | 第47-48页 |
| 2.3.4 巴西龟与人类的血常规指标比较表 | 第48-49页 |
| 2.3.5 巴西龟7天低温潜水过程中每克新鲜肝脏组织和肌肉组织糖原含量的变化 | 第49-51页 |
| 2.3.6 巴西龟7天低温潜水过程中血糖的浓度变化 | 第51页 |
| 2.3.7 巴西龟血清及组织中的乳酸和丙酮酸含量变化 | 第51-54页 |
| 2.3.8 巴西龟低温潜水期间血液中甘油三脂浓度示意图 | 第54-55页 |
| 2.3.9 巴西龟低温潜水期间血清及红细胞内的pH值变化表 | 第55-56页 |
| 2.3.10 巴西龟低温潜水期间红细胞内外的ATP和CP浓度变化示意图 | 第56-58页 |
| 2.3.11 不同室温饲养下的巴西龟红细胞内的ATP浓度 | 第58-59页 |
| 2.3.12 巴西红耳龟和大鼠肝糖原与肌糖原的比较 | 第59-60页 |
| 2.3.13 巴西红耳龟和大鼠和人类血糖浓度的比较 | 第60页 |
| 2.3.14 巴西红耳龟、大鼠和人体血清中乳酸和丙酮酸含量的对比 | 第60-61页 |
| 2.3.15 正常室温下巴西红耳龟、人体、及大鼠红细胞内的ATP浓度对比 | 第61-63页 |
| 2.3.16 巴西红耳龟、大鼠和人体常态条件下乳酸与丙酮酸的比值比较表 | 第63页 |
| 2.3.17 巴西龟低温潜水期间血清的乳酸与丙酮酸平均值的比值 | 第63-64页 |
| 2.4 讨论与总结 | 第64-68页 |
| 2.4.1 样本提取方法的选择与优化 | 第64-65页 |
| 2.4.2 低温潜水能量代谢的讨论 | 第65-68页 |
| 2.5 未来研究展望 | 第68-70页 |
| 参考文献 | 第70-76页 |
| 本人攻读学位期间发表的学术论文 | 第76-77页 |
| 致谢 | 第77-78页 |
