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钙离子及水解酶在HIV-1 Vpu对宿主限制因子Tetherin拮抗过程中的作用研究

摘要第4-6页
Abstract第6-8页
第一章 前言第13-29页
    1.1 宿主限制因子 Tetherin 的研究现状第13-16页
        1.1.1 Tetherin 的结构第13-14页
        1.1.2 Tetherin 的抗病毒机制第14-16页
    1.2 HIV-1 Vpu 的研究现状第16-19页
        1.2.1 HIV-1 简介第16-17页
        1.2.2 Vpu 的结构与离子通道活性第17-18页
        1.2.3 Vpu 对 Tetherin 拮抗作用第18-19页
    1.3 HIV-1 病毒释放过程相关调控因素的研究现状第19-23页
        1.3.1 钙离子对 HIV-1 病毒释放的调控作用第19-20页
        1.3.2 细胞膜去极化与 HIV-1 病毒释放第20-23页
            1.3.2.1 Vpu 引起的细胞膜去极化与其促病毒释放的关系第20-21页
            1.3.2.2 电压依赖钙离子通道简介第21-23页
            1.3.2.3 电压依赖钙离子通道在免疫细胞中的表达第23页
    1.4 几类可能作用于 Tetherin 的水解酶简介第23-26页
        1.4.1 磷脂酶第23-25页
            1.4.1.1 磷脂酶简介第23页
            1.4.1.2 GPI 锚定蛋白与磷脂酶第23-24页
            1.4.1.3 磷脂酶作用于 Tetherin 的可行性的相关研究现状第24-25页
        1.4.2 基质金属蛋白酶第25页
            1.4.2.1 基质金属蛋白酶简介第25页
            1.4.2.2 Tetherin 与基质金属蛋白酶的相互作用第25页
        1.4.3 弗林蛋白酶(Furin)第25-26页
    1.5 论文设计与实验方案第26-29页
        1.5.1 论文目的第26-27页
        1.5.2 实验设计第27-29页
            1.5.2.1 Vpu 的离子通道活性对细胞内钙浓度的影响第27页
            1.5.2.2 细胞内钙浓度对 Vpu 拮抗 Tetherin 功能的影响第27-28页
            1.5.2.3 水解酶对 Vpu 拮抗 Tetherin 功能的影响第28-29页
第二章 实验材料和方法第29-40页
    2.1 材料与试剂第29-31页
    2.2 主要仪器第31-32页
    2.3 实验方法第32-40页
        2.3.1 质粒构建第32-34页
        2.3.2 细胞培养及转染第34页
        2.3.3 蛋白电泳与免疫印迹第34-35页
        2.3.4 稳定表达细胞系的构建第35页
        2.3.5 细胞周期同步化第35-36页
        2.3.6 细胞内游离钙离子浓度测定第36页
        2.3.7 流式细胞术第36-37页
        2.3.8 病毒的收集及含量测定第37页
        2.3.9 RNA 干扰及效果评价第37-40页
            2.3.9.1 siRNA 的合成与转染第37-38页
            2.3.9.2 细胞总 RNA 的提取第38页
            2.3.9.3 RNA 逆转录为 cDNA第38页
            2.3.9.4 荧光定量 PCR第38-40页
第三章 实验结果第40-65页
    3.1 Vpu 的离子通道活性对细胞内钙浓度的影响第40-47页
        3.1.1 Vpu 及 Vpu 突变体的 RFP 融合表达载体的构建第40-42页
        3.1.2 验证 Vpu 对细胞内钙浓度的影响第42-45页
        3.1.3 验证 Vpu 对细胞钙浓度的上调与 Vpu 自身离子通道的相关性第45-46页
        3.1.4 在稳定表达 Vpu 的 293T 细胞系中验证 Vpu 对细胞钙浓度的上调现象第46-47页
    3.2 细胞内钙浓度对 Vpu 拮抗 Tetherin 功能的影响第47-59页
        3.2.1 广谱型钙通道拮抗剂 CdCl2对病毒释放的影响第48-50页
        3.2.2 T 型 VDCC 对 Vpu 拮抗 Tetherin 功能的影响第50-54页
            3.2.2.1 T 型 VDCC 的亚基α1G,α1H 在 293T、Hela 细胞中的内源表达检测第50-51页
            3.2.2.2 T 型 VDCC 拮抗剂 Ethosuximide 对病毒释放的影响第51页
            3.2.2.3 沉默 T 型 VDCC 表达后检测病毒释放变化第51-53页
            3.2.2.4 T 型 VDCC 拮抗剂 Ethosuximide 对细胞表面 Tetherin 表达量的影响第53-54页
        3.2.3 L 型 VDCC 对 Vpu 拮抗 Tetherin 功能的影响第54-59页
            3.2.3.1 L 型 VDCC 的亚基α1C,α1D 在 293T、Hela 细胞中的内源表达检测第54-55页
            3.2.3.2 L 型 VDCC 拮抗剂 Nifedipine 对病毒释放的影响第55-56页
            3.2.3.3 沉默 L 型 VDCC 表达后检测病毒释放变化第56-58页
            3.2.3.4 L 型 VDCC 拮抗剂 Nifedipine 对细胞表面 Tetherin 表达量的影响第58-59页
    3.3 水解酶对 Vpu 拮抗 Tetherin 功能的影响第59-65页
        3.3.1 磷脂酶 C 对 Vpu 拮抗 Tetherin 功能的影响第59-61页
        3.3.2 磷脂酶 D 对 Vpu 拮抗 Tetherin 功能的影响第61-62页
        3.3.3 MMP 对 Vpu 拮抗 Tetherin 功能的影响第62-63页
        3.3.4 验证 Tetherin 的潜在弗林蛋白酶切割位点的可行性第63-65页
第四章 讨论第65-68页
结论第68-69页
参考文献第69-75页
作者简介第75页
在学期间主要科研成果第75-76页
致谢第76页

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