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年龄和腹泻因素对波尔山羊肠道菌群的影响及肠道益生菌的筛选

中文摘要第10-12页
英文摘要第12-14页
1 前言第15-28页
    1.1 肠道菌群的研究概述第15-19页
        1.1.1 肠道菌群的组成与分布第15-16页
        1.1.2 肠道菌群的主要功能第16-17页
            1.1.2.1 调节机体免疫第16页
            1.1.2.2 促进食物消化,提高饲料利用率第16-17页
        1.1.3 肠道菌群的变化规律第17-19页
            1.1.3.1 年龄对肠道菌群的影响第17-18页
            1.1.3.2 疾病对肠道菌群的影响第18-19页
            1.1.3.3 地理环境对肠道菌群的影响第19页
    1.2 肠道菌群研究方法概述第19-22页
        1.2.1 传统培养方法第19页
        1.2.2 肠道菌群多样性分析技术的发展历程第19-22页
            1.2.2.1 荧光原位杂交技术第19页
            1.2.2.2 基因芯片技术第19-20页
            1.2.2.3 末端限制性片段长度多态性技术(T-RFLP)第20页
            1.2.2.4 变性/温度梯度凝胶电泳技术(PCR-DGGE)第20-21页
            1.2.2.5 三代基因组测序技术原理简介第21-22页
    1.3 常用益生菌的种类以及作用机理第22-23页
        1.3.1 厌氧性益生菌第22-23页
        1.3.2 需氧性益生菌第23页
    1.4 羊腹泻性疾病主要的致病菌第23-25页
        1.4.1 大肠杆菌第24页
        1.4.2 沙门氏菌第24页
        1.4.3 魏氏梭菌第24页
        1.4.4 寄生虫第24-25页
    1.5 微生态制剂概述第25-26页
        1.5.1 微生态制剂的发展历程及应用前景第25页
        1.5.2 微生态制剂的临床作用第25-26页
        1.5.3 微生态制剂在反刍动物方面的应用第26页
    1.6 本研究的目的及意义第26-28页
2 材料与方法第28-39页
    2.1 菌株、细胞株与试验动物第28页
    2.2 试剂和仪器第28页
    2.3 年龄腹泻因素对波尔山羊肠道菌群的影响第28-32页
        2.3.1 试验样品的采集第28-29页
        2.3.2 样本DNA提取第29页
        2.3.3 PCR扩增与产物纯化第29页
        2.3.4 生物信息学和统计分析第29-32页
            2.3.4.1 测序数据质量优化第30页
            2.3.4.2 OTU聚类及HEATMAP图绘制第30-31页
            2.3.4.3 基于OTU的VENN图第31页
            2.3.4.4 物种相对丰度图形展示第31页
            2.3.4.5 α多样性分析第31页
            2.3.4.6 β多样性分析第31-32页
            2.3.4.7 STAMP分析第32页
    2.4 波尔山羊肠道益生菌的分离鉴定第32-33页
        2.4.1 肠道菌的分离鉴定第32页
        2.4.2 分离菌的革兰氏染色及显微镜镜检第32页
        2.4.3 生化试验鉴定第32-33页
        2.4.4 细菌16SrDNA基因序列扩增测序测定与系统发育分析第33页
    2.5 益生菌的筛选试验第33-37页
        2.5.1 益生菌的体外抑菌试验第33-34页
        2.5.2 益生菌对肠道蠕动的影响第34页
        2.5.3 生长曲线测定第34页
        2.5.4 耐酸试验第34页
        2.5.5 耐胆盐试验第34页
        2.5.6 药敏试验第34-35页
        2.5.7 体外细胞吸附试验第35页
        2.5.8 竞争试验第35-36页
        2.5.9 占位抑制试验第36页
        2.5.10 备选菌的确定第36页
        2.5.11 动物安全性试验第36-37页
    2.6 微生态制剂的动物实验第37-39页
        2.6.1 小鼠腹泻模型建立第37页
        2.6.2 复合微生态制剂对腹泻小鼠的作用第37-39页
            2.6.2.1 对肠绒毛的形态学的影响第37页
            2.6.2.2 对肠绒毛长度及隐窝深度的影响第37页
            2.6.2.3 对致病菌排出量的影响第37-39页
3 结果第39-69页
    3.1 波尔山羊肠道菌群的高通量测序第39-52页
        3.1.1 测序数据质量分析第39-40页
        3.1.2 基于OTU的HEATMAP图第40-41页
        3.1.3 基于OTU的VENN图第41-42页
        3.1.4 物种相对丰度图第42-45页
        3.1.5 α多样性分析第45-48页
            3.1.5.1 α多样性指数分析第45-46页
            3.1.5.2 Rank-Abundance曲线第46-47页
            3.1.5.3 稀释曲线第47-48页
        3.1.6 β多样性分析第48-50页
            3.1.6.1 WeightedUnifrac距离矩阵第48-49页
            3.1.6.2 PCoA分析及UPGMATree第49-50页
        3.1.7 STAMP分析第50-52页
    3.2 波尔山羊羊肠道益生菌群的分离鉴定第52-65页
        3.2.1 分离菌菌落及镜检形态观察第52-53页
        3.2.2 生化试验结果第53-55页
        3.2.3 16SrDNA基因序列的测定与系统发育分析第55-56页
        3.2.4 益生菌的筛选试验结果第56-65页
            3.2.4.1 益生菌的体外抑菌试验第56-57页
            3.2.4.2 益生菌对肠道蠕动的影响第57页
            3.2.4.3 生长曲线测定第57-58页
            3.2.4.4 耐酸试验第58-59页
            3.2.4.5 耐胆盐试验第59-60页
            3.2.4.6 药敏试验第60-62页
            3.2.4.7 体外细胞吸附试验第62页
            3.2.4.8 竞争试验第62-63页
            3.2.4.9 占位抑制试验第63-65页
            3.2.4.10 备选菌的确定结果第65页
            3.2.4.11 动物安全性试验结果第65页
    3.3 微生态制剂的动物实验第65-69页
        3.3.1 致病菌浓度筛选与小鼠腹泻模型建立第65-66页
        3.3.2 复合微生态制剂对腹泻小鼠的作用第66-69页
            3.3.2.1 对肠绒毛的形态学的影响第66-67页
            3.3.2.2 对肠绒毛长度及隐窝深度的影响第67-68页
            3.3.2.3 致病菌排出数量的影响第68-69页
4 讨论第69-73页
5 结论第73-74页
参考文献第74-82页
致谢第82-83页
硕士期间发表论文情况第83-85页
个人简介第85页

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