缩略语表 | 第6-11页 |
中文摘要 | 第11-15页 |
ABSTRACT | 第15-20页 |
前言 | 第21-23页 |
文献回顾 | 第23-54页 |
第一部分 κ-OR 介导的抗低氧性肺动脉高压作用 | 第54-64页 |
1 目的 | 第54页 |
2 材料 | 第54-56页 |
2.1 动物 | 第54页 |
2.2 试剂 | 第54-55页 |
2.3 仪器 | 第55页 |
2.4 液体配制 | 第55-56页 |
3 方法 | 第56-58页 |
3.1 实验动物分组及处理 | 第56页 |
3.2 低氧性肺动脉高压大鼠模型的建立 | 第56页 |
3.3 大鼠肺血流动力学及右心室肥厚等指标的测定 | 第56-57页 |
3.4 Western-blot 法检测蛋白变化 | 第57-58页 |
3.5 强啡肽水平的检测 | 第58页 |
3.6 统计学处理 | 第58页 |
4 结果 | 第58-62页 |
4.1 低氧对肺血流动力学指标的影响 | 第58-59页 |
4.2 U50,488H 对低氧性肺动脉高压大鼠血流动力学指标的影响 | 第59-60页 |
4.3 U50,488H 对低氧性肺动脉高压大鼠心肌肥厚指标的影响 | 第60页 |
4.4 U50,488H 对肺动脉κOR 表达的影响 | 第60-61页 |
4.5 低氧时内源性κ-OR 激动剂强啡肽水平的变化 | 第61-62页 |
5 讨论 | 第62-64页 |
第二部分 κ-阿片受体介导的肺血管舒张作用 | 第64-70页 |
1 目的 | 第64页 |
2 材料 | 第64-65页 |
2.1 动物 | 第64页 |
2.2 试剂 | 第64页 |
2.3 仪器 | 第64页 |
2.4 液体配制 | 第64-65页 |
3 方法 | 第65-66页 |
3.1 离体肺动脉血管环张力测定 | 第65页 |
3.2 统计学处理 | 第65-66页 |
4 结果 | 第66-68页 |
4.1 U50,488H 对低氧性肺动脉高压大鼠肺血管的舒张作用 | 第66-68页 |
4.2 NO 合成酶抑制剂对κOR 介导的舒血管效应的影响 | 第68页 |
5 讨论 | 第68-70页 |
第三部分 κ–OR 介导的抗肺动脉平滑肌细胞增殖作用 | 第70-77页 |
1 目的 | 第70页 |
2 材料 | 第70-72页 |
2.1 动物 | 第70页 |
2.2 试剂 | 第70页 |
2.3 仪器 | 第70-71页 |
2.4 液体配制 | 第71-72页 |
3 方法 | 第72-74页 |
3.1 PASMC 原代细胞的培养 | 第72页 |
3.2 大鼠 PASMCs 原代细胞的鉴定 | 第72-73页 |
3.3 ~3H-TdR 掺入实验和细胞 MTT 活性检测 | 第73-74页 |
3.4 统计学处理 | 第74页 |
4 结果 | 第74-76页 |
4.1 低氧对 PASMCs 增殖的影响 | 第74-75页 |
4.2 U50,488H 对低氧诱导的 PASMC 增殖作用的影响 | 第75-76页 |
5 讨论 | 第76-77页 |
第四部分 κ-OR 介导的内皮细胞保护作用 | 第77-90页 |
1 目的 | 第77页 |
2 材料 | 第77-80页 |
2.1 动物 | 第77页 |
2.2 试剂 | 第77-79页 |
2.3 仪器 | 第79-80页 |
2.4 液体配制 | 第80页 |
3 方法 | 第80-83页 |
3.1 离体肺动脉血管环张力测定实验检测肺动脉内皮功能 | 第80-81页 |
3.2 大鼠血清 NO 含量的测定 | 第81页 |
3.3 PMVECs 的培养 | 第81-82页 |
3.4 细胞凋亡检测(TUNEL法) | 第82页 |
3.5 肺动脉上 Akt 和 eNOS 磷酸化水平的测定 | 第82-83页 |
3.6 统计学处理 | 第83页 |
4 结果 | 第83-88页 |
4.1 U50,488H 对 ACh、SNP 介导的血管舒张反应的影响 | 第83-84页 |
4.2 U50,488H 对 HPH 大鼠血清 NO 水平的影响 | 第84-85页 |
4.3 U50,488H 对低氧条件下肺微血管内皮细胞 NO 生成的影响 | 第85-86页 |
4.4 U50,488H 抗低氧引起的 PMVECs 凋亡的作用 | 第86-87页 |
4.5 U50,488H 对 PMVECs 的 Akt 和 eNOS 磷酸化水平的影响 | 第87-88页 |
5 讨论 | 第88-90页 |
小结 | 第90-91页 |
参考文献 | 第91-103页 |
个人简历和研究成果 | 第103-105页 |
致谢 | 第105页 |