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Ca2+激活氯离子通道天然小分子抑制剂的发现及抗腹泻机制研究

中文摘要第4-8页
Abstract第8-11页
第一章 文献综述第15-45页
    1.1 分泌型腹泻概述第15-16页
    1.2 腹泻的主要类型和致病机制第16-20页
        1.2.1 细菌性腹泻第17页
        1.2.2 病毒性腹泻第17-18页
        1.2.3 遗传性腹泻第18页
        1.2.4 炎症性腹泻第18-20页
    1.3 分泌型腹泻的治疗策略第20-27页
        1.3.1 口服补液盐第20-21页
        1.3.2 抗动力制剂第21页
        1.3.3 抗分泌制剂第21-22页
        1.3.4 益生菌第22页
        1.3.5 新的抗腹泻治疗方法第22-27页
    1.4 氯离子通道与分泌型腹泻第27-41页
        1.4.1 CFTR与分泌型腹泻第27-28页
        1.4.2 CaCC与分泌型腹泻第28-39页
        1.4.3 TMEM16A型CaCC在肠动力调节中的作用第39-41页
    1.5 CFTR和CaCC调节剂的研究进展第41-44页
    1.6 研究的目的和意义第44-45页
第二章 材料与方法第45-53页
    2.1 实验材料第45-47页
        2.1.1 细胞第45页
        2.1.2 动物第45页
        2.1.3 主要实验试剂第45-46页
        2.1.4 实验仪器第46-47页
    2.2 实验方法第47-53页
        2.2.1 细胞培养第47页
        2.2.2 细胞荧光测定第47-48页
        2.2.3 短路电流测定第48-50页
        2.2.4 细胞内Ca~(2+)浓度测定第50页
        2.2.5 肠平滑肌收缩测定第50页
        2.2.6 小鼠肠蠕动实验第50-51页
        2.2.7 轮状病毒扩增第51页
        2.2.8 轮状病毒腹泻小鼠的模型建立第51页
        2.2.9 粪便含水量测定第51页
        2.2.10组织切片第51-52页
        2.2.11肠吸收实验第52页
        2.2.14数据统计分析第52-53页
第三章 实验结果第53-73页
    3.1 CaCC氯离子通道抑制剂的筛选第53-55页
    3.2 CaCC氯离子通道抑制剂的分子药理学分析第55-59页
        3.2.1 白藜芦醇低聚体对CaCC抑制活性的细胞短路电流测定第55-56页
        3.2.2 白藜芦醇低聚体作用位点分析第56-57页
        3.2.3 白藜芦醇低聚体抑制 CaCC C~?的特性分析第57-58页
        3.2.4 白藜芦醇低聚体对细胞内Ca~(2+)浓度的影响第58-59页
    3.3 CaCC氯离子通道抑制剂的选择性分析第59-61页
        3.3.1 TV和RV对TMEM16A的抑制作用第59-60页
        3.3.2 拳参组分D5对TMEM16A的抑制作用第60页
        3.3.3 TV和RV对CFTR的抑制作用第60-61页
    3.4 CaCC氯离子通道抑制剂对结肠粘膜短路电流的抑制作用第61-65页
        3.4.1 TV和RV对卡巴胆碱刺激小鼠结肠Cl?电流的抑制作用第61-63页
        3.4.2 Crofelemer对小鼠结肠Cl?电流的抑制作用第63-64页
        3.4.3 拳参组分D5对卡巴胆碱刺激大鼠结肠Cl?电流的抑制作用第64-65页
    3.5 Ca CC氯离子通道抑制剂对肠动力的影响第65-67页
        3.5.1 TV和RV对肠平滑肌收缩的抑制作用第65-66页
        3.5.2 TV和RV对肠蠕动的抑制作用第66页
        3.5.3 拳参组分D5 对肠蠕动的抑制作用第66-67页
    3.6 TV和RV抗轮状病毒腹泻的活性研究第67-71页
        3.6.1 TV和RV阻止轮状病毒感染新生小鼠的水样腹泻第67-70页
        3.6.2 TV和RV对轮状病毒感染和肠液体吸收的作用第70-71页
    3.7 液相色谱分析拳参组分D5 的组成第71-73页
第四章 讨论第73-77页
第五章 结论第77-79页
参考文献第79-117页
作者简介及科研成果第117-119页
致谢第119页

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