中文摘要 | 第4-8页 |
Abstract | 第8-11页 |
第一章 文献综述 | 第15-45页 |
1.1 分泌型腹泻概述 | 第15-16页 |
1.2 腹泻的主要类型和致病机制 | 第16-20页 |
1.2.1 细菌性腹泻 | 第17页 |
1.2.2 病毒性腹泻 | 第17-18页 |
1.2.3 遗传性腹泻 | 第18页 |
1.2.4 炎症性腹泻 | 第18-20页 |
1.3 分泌型腹泻的治疗策略 | 第20-27页 |
1.3.1 口服补液盐 | 第20-21页 |
1.3.2 抗动力制剂 | 第21页 |
1.3.3 抗分泌制剂 | 第21-22页 |
1.3.4 益生菌 | 第22页 |
1.3.5 新的抗腹泻治疗方法 | 第22-27页 |
1.4 氯离子通道与分泌型腹泻 | 第27-41页 |
1.4.1 CFTR与分泌型腹泻 | 第27-28页 |
1.4.2 CaCC与分泌型腹泻 | 第28-39页 |
1.4.3 TMEM16A型CaCC在肠动力调节中的作用 | 第39-41页 |
1.5 CFTR和CaCC调节剂的研究进展 | 第41-44页 |
1.6 研究的目的和意义 | 第44-45页 |
第二章 材料与方法 | 第45-53页 |
2.1 实验材料 | 第45-47页 |
2.1.1 细胞 | 第45页 |
2.1.2 动物 | 第45页 |
2.1.3 主要实验试剂 | 第45-46页 |
2.1.4 实验仪器 | 第46-47页 |
2.2 实验方法 | 第47-53页 |
2.2.1 细胞培养 | 第47页 |
2.2.2 细胞荧光测定 | 第47-48页 |
2.2.3 短路电流测定 | 第48-50页 |
2.2.4 细胞内Ca~(2+)浓度测定 | 第50页 |
2.2.5 肠平滑肌收缩测定 | 第50页 |
2.2.6 小鼠肠蠕动实验 | 第50-51页 |
2.2.7 轮状病毒扩增 | 第51页 |
2.2.8 轮状病毒腹泻小鼠的模型建立 | 第51页 |
2.2.9 粪便含水量测定 | 第51页 |
2.2.10组织切片 | 第51-52页 |
2.2.11肠吸收实验 | 第52页 |
2.2.14数据统计分析 | 第52-53页 |
第三章 实验结果 | 第53-73页 |
3.1 CaCC氯离子通道抑制剂的筛选 | 第53-55页 |
3.2 CaCC氯离子通道抑制剂的分子药理学分析 | 第55-59页 |
3.2.1 白藜芦醇低聚体对CaCC抑制活性的细胞短路电流测定 | 第55-56页 |
3.2.2 白藜芦醇低聚体作用位点分析 | 第56-57页 |
3.2.3 白藜芦醇低聚体抑制 CaCC C~?的特性分析 | 第57-58页 |
3.2.4 白藜芦醇低聚体对细胞内Ca~(2+)浓度的影响 | 第58-59页 |
3.3 CaCC氯离子通道抑制剂的选择性分析 | 第59-61页 |
3.3.1 TV和RV对TMEM16A的抑制作用 | 第59-60页 |
3.3.2 拳参组分D5对TMEM16A的抑制作用 | 第60页 |
3.3.3 TV和RV对CFTR的抑制作用 | 第60-61页 |
3.4 CaCC氯离子通道抑制剂对结肠粘膜短路电流的抑制作用 | 第61-65页 |
3.4.1 TV和RV对卡巴胆碱刺激小鼠结肠Cl?电流的抑制作用 | 第61-63页 |
3.4.2 Crofelemer对小鼠结肠Cl?电流的抑制作用 | 第63-64页 |
3.4.3 拳参组分D5对卡巴胆碱刺激大鼠结肠Cl?电流的抑制作用 | 第64-65页 |
3.5 Ca CC氯离子通道抑制剂对肠动力的影响 | 第65-67页 |
3.5.1 TV和RV对肠平滑肌收缩的抑制作用 | 第65-66页 |
3.5.2 TV和RV对肠蠕动的抑制作用 | 第66页 |
3.5.3 拳参组分D5 对肠蠕动的抑制作用 | 第66-67页 |
3.6 TV和RV抗轮状病毒腹泻的活性研究 | 第67-71页 |
3.6.1 TV和RV阻止轮状病毒感染新生小鼠的水样腹泻 | 第67-70页 |
3.6.2 TV和RV对轮状病毒感染和肠液体吸收的作用 | 第70-71页 |
3.7 液相色谱分析拳参组分D5 的组成 | 第71-73页 |
第四章 讨论 | 第73-77页 |
第五章 结论 | 第77-79页 |
参考文献 | 第79-117页 |
作者简介及科研成果 | 第117-119页 |
致谢 | 第119页 |