| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 1 引言 | 第10-12页 |
| 2 材料、仪器与方法 | 第12-20页 |
| 2.1 实验动物 | 第12页 |
| 2.2 主要仪器 | 第12-13页 |
| 2.3 主要试剂及其配方 | 第13-16页 |
| 2.3.1 常规试剂 | 第13-14页 |
| 2.3.2 免疫组织化学所用试剂 | 第14-15页 |
| 2.3.3 PCR所用试剂 | 第15-16页 |
| 2.4 实验方法 | 第16-19页 |
| 2.4.1 PCR鉴定技术 | 第16-17页 |
| 2.4.2 免疫荧光染色技术 | 第17-18页 |
| 2.4.3 尼氏染色技术 | 第18页 |
| 2.4.4 Brdu标记增殖细胞技术 | 第18-19页 |
| 2.5 统计学处理 | 第19-20页 |
| 3 结果 | 第20-36页 |
| 3.1 Reelin与脊髓的形成 | 第20-25页 |
| 3.1.1 野生型小鼠脊髓的形成 | 第20-21页 |
| 3.1.2 Reelin基因缺失小鼠（Reeler）脊髓的形成 | 第21-25页 |
| 3.2 Reelin与海马的形成 | 第25-29页 |
| 3.2.1 野生型小鼠海马的形成 | 第25-26页 |
| 3.2.2 Reelin基因缺失小鼠（Reeler）海马的形成 | 第26-29页 |
| 3.3 Reelin与新皮质的形成 | 第29-36页 |
| 3.3.1 野生型小鼠新皮质的形成 | 第29-30页 |
| 3.3.2 Reelin基因缺失小鼠（Reeler）新皮质的形成 | 第30-36页 |
| 4 讨论 | 第36-40页 |
| 4.1 Reelin几乎不参与调控脊髓神经细胞的第一次迁移 | 第36-37页 |
| 4.2 Reelin参与调节海马神经细胞的第二次迁移和皮质板的形成 | 第37页 |
| 4.3 Reelin参与调节新皮质皮质板的继续分层 | 第37-38页 |
| 4.4 Reelin极有可能是皮质进化的关键分子 | 第38-40页 |
| 5 结论 | 第40-42页 |
| 参考文献 | 第42-44页 |
| 文献综述 | 第44-62页 |
| 参考文献 | 第56-62页 |
| 附录 | 第62-63页 |
| 攻读学位期间发表学术论文目录 | 第63-64页 |
| 致谢 | 第64-65页 |
