| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5页 |
| 英文缩写词 | 第6-9页 |
| 第1章 绪论 | 第9-23页 |
| 1.1 癌症研究概况 | 第9-11页 |
| 1.2 肿瘤转移现状 | 第11页 |
| 1.3 EMT在肿瘤转移中的作用 | 第11-13页 |
| 1.4 表观遗传修饰的调控 | 第13-17页 |
| 1.4.1 DNA甲基化 | 第13页 |
| 1.4.2 组蛋白修饰 | 第13-14页 |
| 1.4.3 组蛋白甲基化酶修饰 | 第14-16页 |
| 1.4.4 EZH2在病毒复制中的作用 | 第16页 |
| 1.4.5 组蛋白乙酰化 | 第16-17页 |
| 1.4.6 BET蛋白家族抑制剂 | 第17页 |
| 1.5 EMT跟表观遗传修饰的关系 | 第17-19页 |
| 1.6 肿瘤转移相关信号通路的调控 | 第19-21页 |
| 1.6.1 TGF-β信号途径 | 第19-20页 |
| 1.6.2 RHO信号通路 | 第20页 |
| 1.6.3 Hippo信号通路 | 第20-21页 |
| 1.7 结语 | 第21-23页 |
| 第2章 TET1可以介导结肠癌发生EMT过程 | 第23-45页 |
| 2.1 引言 | 第23页 |
| 2.2 实验材料 | 第23-26页 |
| 2.2.1 药品 | 第23页 |
| 2.2.2 仪器设备 | 第23-24页 |
| 2.2.3 试剂及耗材 | 第24-25页 |
| 2.2.4 引物的设计合成 | 第25-26页 |
| 2.3 实验方法 | 第26-34页 |
| 2.3.1 细胞的构建、复苏与培养 | 第26-27页 |
| 2.3.2 细胞转染 | 第27-28页 |
| 2.3.3 CCK8细胞检测法 | 第28-29页 |
| 2.3.4 RNA提取及RT-PCR实验 | 第29-30页 |
| 2.3.5 免疫荧光检测 | 第30-32页 |
| 2.3.6 Transwell细胞侵袭实验 | 第32-33页 |
| 2.3.7 细胞划痕（Wound-Healing）实验 | 第33-34页 |
| 2.3.8 数据分析及统计学处理 | 第34页 |
| 2.4 实验结果 | 第34-42页 |
| 2.4.1 敲低TET1可以促进DLD1细胞生长 | 第34-35页 |
| 2.4.2 敲低TET1基因可以促进DLD1细胞的迁移 | 第35-37页 |
| 2.4.3 敲低TET1基因可以促进DLD1细胞的迁移 | 第37-38页 |
| 2.4.4 敲低TET1基因可以介导EMT途径的发生 | 第38-42页 |
| 2.5 讨论 | 第42-43页 |
| 2.6 本章小结 | 第43-45页 |
| 第3章 组蛋白甲基化在结肠癌转移中作用的研究 | 第45-63页 |
| 3.1 引言 | 第45-46页 |
| 3.2 实验材料 | 第46-48页 |
| 3.2.1 药品 | 第46页 |
| 3.2.2 仪器设备 | 第46页 |
| 3.2.3 试剂及耗材 | 第46-47页 |
| 3.2.4 引物的设计合成 | 第47-48页 |
| 3.3 实验方法 | 第48-51页 |
| 3.3.1 细胞的复苏与培养 | 第48页 |
| 3.3.2 细胞转染 | 第48-49页 |
| 3.3.3 RNA提取及RT-PCR实验 | 第49-51页 |
| 3.3.4 Transwell细胞侵袭实验 | 第51页 |
| 3.3.5 细胞划痕（Wound-Healing ）实验 | 第51页 |
| 3.3.6 数据分析及统计学处理 | 第51页 |
| 3.4 实验结果 | 第51-59页 |
| 3.4.1 探究mRNA水平TET1同组蛋白甲基化酶EZH2 UTX1之间的关系 | 第51-52页 |
| 3.4.2 EZH2、UTX1对DLD1细胞生长的影响 | 第52-54页 |
| 3.4.3 EZH2、UTX1对DLD1细胞侵袭能力的影响 | 第54-55页 |
| 3.4.4 EZH2、UTX1对DLD1细胞迁移能力的影响 | 第55-59页 |
| 3.5 讨论 | 第59-61页 |
| 3.6 本章小结 | 第61-63页 |
| 结论 | 第63-65页 |
| 参考文献 | 第65-71页 |
| 攻读硕士学位期间所发表的学术论文 | 第71-73页 |
| 致谢 | 第73页 |
