| 中文摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 第一章 前言 | 第12-14页 |
| 第二章 实验材料与方法 | 第14-27页 |
| 2.1 实验材料 | 第14-16页 |
| 2.1.1 分子生物学试剂 | 第14页 |
| 2.1.2 细胞培养相关试剂及材料 | 第14页 |
| 2.1.3 抗体 | 第14页 |
| 2.1.4 实验小鼠 | 第14页 |
| 2.1.5 细胞培养相关试剂及材料 | 第14-15页 |
| 2.1.6 相关引物 | 第15-16页 |
| 2.2 实验方法 | 第16-27页 |
| 2.2.1 淋巴细胞的单个悬浮细胞制备 | 第16页 |
| 2.2.2 免疫磁珠分选 | 第16-17页 |
| 2.2.3 RNA抽提 | 第17页 |
| 2.2.4 cDNA的制备 | 第17-18页 |
| 2.2.5 质粒构建 | 第18-19页 |
| 2.2.6 质粒DNA的转化 | 第19页 |
| 2.2.7 质粒DNA小量抽取 | 第19-20页 |
| 2.2.8 质粒DNA大量抽取 | 第20页 |
| 2.2.9 细胞培养 | 第20-21页 |
| 2.2.10 脂质体转染 | 第21页 |
| 2.2.11 钙转 | 第21-22页 |
| 2.2.12 荧光素酶报告系统的检测 | 第22-23页 |
| 2.2.13 免疫沉淀 | 第23页 |
| 2.2.14 流式细胞术 | 第23-24页 |
| 2.2.15 Western-Blot | 第24页 |
| 2.2.16 CD 4~+T细胞活化 | 第24-25页 |
| 2.2.17 慢病毒制备和感染 | 第25页 |
| 2.2.18 CCK8增殖能力检测 | 第25-26页 |
| 2.2.19 小鼠肿瘤模型建立 | 第26页 |
| 2.2.20 统计学分析 | 第26-27页 |
| 第三章 Cbl-b对T细胞活化和肿瘤杀伤作用 | 第27-30页 |
| 3.1 Cbl-b抑制了CD4~+T细胞的活化 | 第27页 |
| 3.2 Cbl-b缺失的小鼠肿瘤生长受到抑制 | 第27-28页 |
| 3.3 小结 | 第28-30页 |
| 第四章 Cbl-b对miRNAs表达的影响 | 第30-35页 |
| 4.1 Cbl-b缺失改变CD4~+T细胞miRNAs表达谱 | 第30-32页 |
| 4.2 mir-99a和mir-125b对细胞的影响 | 第32-34页 |
| 4.3 小结 | 第34-35页 |
| 第五章 Cbl-b对miRNAs表达调控的分子机制 | 第35-44页 |
| 5.1 表达载体的构建和鉴定 | 第35-36页 |
| 5.2 HOXA10调控miR-99a和miR-125b的分子表达,促进CD4~+T细胞活化 | 第36-37页 |
| 5.3 Cbl-b调控miRNAs的相关分子及其相互作用 | 第37-43页 |
| 5.3.1 Cbl-b与HOXA10的关系 | 第37-38页 |
| 5.3.2 与Cbl-b或HOXA10相互作用蛋白 | 第38-41页 |
| 5.3.3 SHP-2泛素化水平和HOXA10磷酸化水平变化 | 第41-43页 |
| 5.4 小结 | 第43-44页 |
| 第六章 miRNAs调控的下游靶分子 | 第44-48页 |
| 6.1 miRNAs调控的下游靶分子预测 | 第44-46页 |
| 6.2 miRNAs调控的下游靶分子验证 | 第46-47页 |
| 6.3 小结 | 第47-48页 |
| 讨论 | 第48-50页 |
| 参考文献 | 第50-53页 |
| 综述 | 第53-70页 |
| 参考文献 | 第59-70页 |
| 名词缩写词 | 第70-72页 |
| 致谢 | 第72页 |
