| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 目录 | 第7-9页 |
| 引言 | 第9-10页 |
| 1 文献综述脂肪间充质干细胞的神经向分化能力及应用潜能 | 第10-14页 |
| 2 骨髓及脂肪间充质干细胞的分离培养及鉴定 | 第14-29页 |
| 2.1 前言 | 第14页 |
| 2.2 材料与方法 | 第14-19页 |
| 2.2.1 材料 | 第14页 |
| 2.2.2 试剂 | 第14-15页 |
| 2.2.3 主要设备 | 第15-16页 |
| 2.2.4 基本试剂配制 | 第16-17页 |
| 2.2.5 AMSCs的原代培养 | 第17页 |
| 2.2.6 MSCs的体外扩增 | 第17-18页 |
| 2.2.7 MSCs的形态学观察 | 第18页 |
| 2.2.8 流式细胞仪检测MSCs CD分子表面抗原 | 第18页 |
| 2.2.9 MSCs向成骨细胞诱导分化 | 第18页 |
| 2.2.10 MSCs向成脂细胞诱导分化 | 第18-19页 |
| 2.3 结果 | 第19-24页 |
| 2.3.1 AMSCs形态学观察 | 第19-20页 |
| 2.3.2 BMSCs形态学观察 | 第20-21页 |
| 2.3.3 MSCs表面抗原鉴定 | 第21-22页 |
| 2.3.4 MSCs成骨细胞诱导分化 | 第22-23页 |
| 2.3.5 MSCs成脂细胞诱导分化 | 第23-24页 |
| 2.3.6 MSCs增殖能力比较 | 第24页 |
| 2.4 讨论 | 第24-28页 |
| 2.5 小结 | 第28-29页 |
| 3 AMSCs神经向诱导实验方法优化 | 第29-48页 |
| 3.1 前言 | 第29页 |
| 3.2 材料和方法 | 第29-32页 |
| 3.2.1 材料 | 第29-30页 |
| 3.2.2 试剂 | 第30页 |
| 3.2.3 主要设备 | 第30页 |
| 3.2.4 基本试剂配制 | 第30-31页 |
| 3.2.5 成神经诱导方法 | 第31页 |
| 3.2.6 免疫荧光染色 | 第31页 |
| 3.2.7 统计学分析 | 第31-32页 |
| 3.3 结果 | 第32-42页 |
| 3.3.1 AMSCs成神经诱导分化过程形态学观察 | 第32-35页 |
| 3.3.2 AMSCs成神经诱导分化过程免疫荧光检测 | 第35-41页 |
| 3.3.3 突触形成检测 | 第41页 |
| 3.3.4 诱导后类神经元细胞分泌功能检测 | 第41-42页 |
| 3.4 讨论 | 第42-47页 |
| 3.5 小结 | 第47-48页 |
| 4 成球诱导法对类神经细胞内钙离子流变化的影响 | 第48-57页 |
| 4.1 前言 | 第48-49页 |
| 4.2 材料和方法 | 第49-50页 |
| 4.2.1 材料 | 第49页 |
| 4.2.2 方法 | 第49-50页 |
| 4.3 结果 | 第50-54页 |
| 4.3.1 成神经分化后细胞内游离Ca~(2+)浓度的变化 | 第50-52页 |
| 4.3.2 流式细胞仪检测细胞钙离子流变化 | 第52-54页 |
| 4.4 讨论 | 第54-56页 |
| 4.5 小结 | 第56-57页 |
| 结论 | 第57-58页 |
| 参考文献 | 第58-64页 |
| 附录A 缩略语表 | 第64-65页 |
| 附录B T型钙通道与乳腺癌 | 第65-71页 |
| 攻读硕士学位期间发表学术论文情况 | 第71页 |
| 攻读硕士学位期间参加学术会议情况 | 第71-72页 |
| 致谢 | 第72页 |
