| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5页 |
| 引言 | 第9-17页 |
| 1.1 无脊椎动物的免疫防御 | 第9页 |
| 1.2 补体系统的概述 | 第9-12页 |
| 1.2.1 补体系统的组成成分 | 第9-10页 |
| 1.2.2 补体系统的激活途径 | 第10-12页 |
| 1.2.3 补体系统的生物学功能 | 第12页 |
| 1.3 含C1q结构域蛋白的研究概述 | 第12-13页 |
| 1.3.1 补体成分C1q的结构及功能 | 第12-13页 |
| 1.3.2 含C1q结构域蛋白的研究概况 | 第13页 |
| 1.4 文蛤的病害及分子生物学研究进展 | 第13-16页 |
| 1.4.1 我国文蛤的养殖现状及病害研究进展 | 第14页 |
| 1.4.2 文蛤的分子生物学研究进展 | 第14-16页 |
| 1.5 本研究的目的及意义 | 第16-17页 |
| 1.5.1 研究目的 | 第16页 |
| 1.5.2 研究意义 | 第16-17页 |
| 2 文蛤C1q基因的克隆与序列分析 | 第17-25页 |
| 2.1 前言 | 第17页 |
| 2.2 材料和方法 | 第17-19页 |
| 2.2.1 实验用文蛤 | 第17页 |
| 2.2.2 方法 | 第17-19页 |
| 2.3 结果 | 第19-23页 |
| 2.3.1 MmC1q cDNA序列分析 | 第19-20页 |
| 2.3.2 MmC1q氨基酸序列分析 | 第20-21页 |
| 2.3.3 MmC1q蛋白功能域预测 | 第21页 |
| 2.3.4 C1q编码的氨基酸的同源性比对和分子进化分析 | 第21-23页 |
| 2.4 讨论 | 第23-25页 |
| 3 文蛤C1q基因的时序表达与组织分布表达 | 第25-33页 |
| 3.1 前言 | 第25页 |
| 3.2 实验材料和方法 | 第25-28页 |
| 3.2.1 实验用文蛤 | 第25页 |
| 3.2.2 文蛤总RNA的提取 | 第25-26页 |
| 3.2.3 反转录 | 第26-27页 |
| 3.2.4 Real-time PCR | 第27-28页 |
| 3.3 结果 | 第28-32页 |
| 3.3.1 RNA以及cDNA的检测 | 第28-29页 |
| 3.3.2 荧光定量PCR特异性引物以及内参基因的检测 | 第29-30页 |
| 3.3.3 菌刺激后MmC1q的相对表达 | 第30-31页 |
| 3.3.4 MmC1q组织分布相对表达 | 第31-32页 |
| 3.4 讨论 | 第32-33页 |
| 4 文蛤C1q基因的体外重组表达与活性研究 | 第33-44页 |
| 4.1 前言 | 第33页 |
| 4.2 实验方法 | 第33-39页 |
| 4.2.1 培养基和电泳缓冲液的配置 | 第33页 |
| 4.2.2 感受态细胞的制备、连接及转化 | 第33-34页 |
| 4.2.3 重组质粒的构建 | 第34-36页 |
| 4.2.4 重组蛋白的表达及检测 | 第36-37页 |
| 4.2.5 重组蛋白的纯化 | 第37-38页 |
| 4.2.6 重组蛋白的浓度测定及活性分析 | 第38-39页 |
| 4.3 结果 | 第39-42页 |
| 4.4 讨论 | 第42-44页 |
| 结论 | 第44-45页 |
| 参考文献 | 第45-50页 |
| 攻读硕士学位期间发表学术论文情况 | 第50-51页 |
| 致谢 | 第51页 |