| 摘要 | 第3-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 缩写符号说明 | 第9-15页 |
| 第一章 绪论 | 第15-32页 |
| 1.1 黄酒概述 | 第15-23页 |
| 1.1.1 黄酒的分类 | 第15-18页 |
| 1.1.2 黄酒的发展现状 | 第18-19页 |
| 1.1.3 黄酒检测技术的研究现状 | 第19-23页 |
| 1.2 拉曼光谱 | 第23-29页 |
| 1.2.1 拉曼光谱产生机理 | 第23-24页 |
| 1.2.2 拉曼光谱分析技术 | 第24-26页 |
| 1.2.3 拉曼光谱与化学计量学 | 第26页 |
| 1.2.4 拉曼光谱分析技术在食品分析检测中的应用 | 第26-29页 |
| 1.3 本课题的立题背景与意义 | 第29-30页 |
| 1.4 本课题的主要研究内容 | 第30-32页 |
| 第二章 拉曼光谱分析技术在黄酒发酵过程监控中的应用研究 | 第32-47页 |
| 2.1 引言 | 第32页 |
| 2.2 实验材料与主要仪器 | 第32-33页 |
| 2.2.1 实验材料 | 第32页 |
| 2.2.2 实验仪器 | 第32-33页 |
| 2.3 实验方法 | 第33-38页 |
| 2.3.1 黄酒发酵实验 | 第33-34页 |
| 2.3.2 发酵样品的采集 | 第34页 |
| 2.3.3 测定发酵参数的参考方法 | 第34页 |
| 2.3.4 光谱数据的采集 | 第34-35页 |
| 2.3.5 数据处理与分析 | 第35-38页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第38-46页 |
| 2.4.1 发酵参数分析 | 第38-39页 |
| 2.4.2 光谱解析 | 第39-41页 |
| 2.4.3 主成分分析 | 第41-43页 |
| 2.4.4 定量分析 | 第43-46页 |
| 2.5 本章小结 | 第46-47页 |
| 第三章 拉曼光谱分析技术在黄酒品质分析中的应用研究 | 第47-66页 |
| 3.1 引言 | 第47页 |
| 3.2 实验材料与主要仪器 | 第47-48页 |
| 3.2.1 实验材料 | 第47页 |
| 3.2.2 实验仪器 | 第47-48页 |
| 3.3 实验方法 | 第48-51页 |
| 3.3.1 测定黄酒品质指标的参考方法 | 第48-49页 |
| 3.3.2 光谱数据的采集 | 第49页 |
| 3.3.3 数据处理与分析 | 第49-51页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第51-64页 |
| 3.4.1 黄酒各品质指标的数值统计分析 | 第51-53页 |
| 3.4.2 成品黄酒光谱解析 | 第53-54页 |
| 3.4.3 主成分分析 | 第54-56页 |
| 3.4.4 拉曼光谱预处理 | 第56-57页 |
| 3.4.5 回归模型的建立与分析 | 第57-64页 |
| 3.5 本章小结 | 第64-66页 |
| 第四章 分子印迹-表面增强拉曼光谱联用技术在黄酒氨基甲酸乙酯检测中的应用研究 | 第66-86页 |
| 4.1 引言 | 第66-67页 |
| 4.2 实验材料与主要仪器 | 第67-68页 |
| 4.2.1 实验材料 | 第67-68页 |
| 4.2.2 实验仪器 | 第68页 |
| 4.3 实验方法 | 第68-72页 |
| 4.3.1 树枝状银纳米结构的合成 | 第68页 |
| 4.3.2 氨基甲酸乙酯检测的参照方法 | 第68-69页 |
| 4.3.3 氨基甲酸乙酯分子印迹聚合物的制备 | 第69-70页 |
| 4.3.4 分子印迹聚合物的表征 | 第70页 |
| 4.3.5 吸附试验 | 第70-71页 |
| 4.3.6 基于MIPs的固相萃取（MIPs-SPE） | 第71-72页 |
| 4.3.7 MIPs-SERS联用检测黄酒中的氨基甲酸乙酯 | 第72页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第72-85页 |
| 4.4.1 分子印迹聚合物的表征 | 第72-75页 |
| 4.4.2 MIPs和NIPs的吸附性能 | 第75-80页 |
| 4.4.3 MIPs-SPE提取黄酒中的氨基甲酸乙酯 | 第80-81页 |
| 4.4.4 SERS基底性能评估 | 第81-82页 |
| 4.4.5 拉曼谱图解析 | 第82-83页 |
| 4.4.6 主成分分析 | 第83-84页 |
| 4.4.7 多元回归分析 | 第84-85页 |
| 4.5 本章小结 | 第85-86页 |
| 第五章 荧光-表面增强拉曼双重响应传感器在黄酒组胺检测中的应用研究 | 第86-108页 |
| 5.1 引言 | 第86-87页 |
| 5.2 实验材料与主要仪器 | 第87-88页 |
| 5.2.1 实验材料 | 第87页 |
| 5.2.2 实验仪器 | 第87-88页 |
| 5.3 实验方法 | 第88-92页 |
| 5.3.1 组胺检测的参照方法 | 第88页 |
| 5.3.2 上转换荧光纳米粒子的制备 | 第88-89页 |
| 5.3.3“一步法”荧光-SERS双响应印迹材料的制备 | 第89页 |
| 5.3.4“一步法”荧光-SERS双响应印迹材料的表征 | 第89页 |
| 5.3.5 吸附试验 | 第89-91页 |
| 5.3.6 UCNPs@MIPs-AgNPs的选择性分析 | 第91页 |
| 5.3.7 荧光与SERS标准曲线的建立 | 第91-92页 |
| 5.3.8 实际黄酒样品检测 | 第92页 |
| 5.4 结果与讨论 | 第92-106页 |
| 5.4.1 荧光-SERS印迹聚合物的表征 | 第92-99页 |
| 5.4.2 荧光-SERS双响应传感器的工作原理 | 第99-101页 |
| 5.4.3 基于荧光模式检测组胺含量 | 第101-103页 |
| 5.4.4 基于SERS模式检测组胺含量 | 第103-105页 |
| 5.4.5 实际黄酒样品的检测 | 第105-106页 |
| 5.5 本章小结 | 第106-108页 |
| 第六章 侧向层析-表面增强拉曼光谱联用技术在黄酒致病菌检测中的应用研究 | 第108-132页 |
| 6.1 引言 | 第108-109页 |
| 6.2 实验材料与主要仪器 | 第109页 |
| 6.2.1 实验材料 | 第109页 |
| 6.2.2 实验仪器 | 第109页 |
| 6.3 实验方法 | 第109-114页 |
| 6.3.1 纳米粒子的合成 | 第109-110页 |
| 6.3.2 纳米粒子的表征 | 第110-111页 |
| 6.3.3 信号探针的制备 | 第111-112页 |
| 6.3.4 LFICA试纸条的组装 | 第112页 |
| 6.3.5 LFICA检测沙门氏菌方法的建立 | 第112-114页 |
| 6.3.6 交叉反应分析 | 第114页 |
| 6.3.7 SERS-LFICA用于黄酒样品中沙门氏菌的检测 | 第114页 |
| 6.4 结果与讨论 | 第114-131页 |
| 6.4.1 纳米粒子的表征 | 第114-120页 |
| 6.4.2 基于磁聚焦的LFICA检测方法的工作原理 | 第120-123页 |
| 6.4.3 基于磁聚焦的LFICA检测方法的条件优化 | 第123-124页 |
| 6.4.4 基于磁聚焦的SERS-LFICA的建立 | 第124-127页 |
| 6.4.5 基于磁聚焦的EACA-LFICA的建立 | 第127-129页 |
| 6.4.6 SERS-LFICA与EACA-LFICA的对比 | 第129页 |
| 6.4.7 交叉反应实验 | 第129-130页 |
| 6.4.8 黄酒样品中鼠伤寒沙门氏菌的检测 | 第130-131页 |
| 6.5 本章小结 | 第131-132页 |
| 论文主要结论 | 第132-134页 |
| 展望 | 第134-135页 |
| 论文创新点 | 第135-136页 |
| 致谢 | 第136-137页 |
| 参考文献 | 第137-154页 |
| 附录：作者攻读博士期间发表成果清单 | 第154-155页 |
