| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 第一章 绪论 | 第14-30页 |
| 1.1 油菜细胞质雄性不育体系 | 第14-17页 |
| 1.1.1 pol CMS | 第14-15页 |
| 1.1.2 Shan 2A CMS | 第15页 |
| 1.1.3 Ogu CMS | 第15页 |
| 1.1.4 Nap CMS | 第15-16页 |
| 1.1.5 Tour CMS | 第16页 |
| 1.1.6 NCa CMS | 第16页 |
| 1.1.7 Nsa CMS | 第16-17页 |
| 1.1.8 Hau CMS | 第17页 |
| 1.2 油菜细胞质雄性不育三系的选育方法 | 第17页 |
| 1.2.1 油菜细胞质不育系的选育 | 第17页 |
| 1.2.2 保持系的选育 | 第17页 |
| 1.2.3 恢复系的选育 | 第17页 |
| 1.3 雄性不育与同工酶 | 第17-18页 |
| 1.4 油菜细胞质雄性不育的细胞学研究 | 第18-19页 |
| 1.5 植物分子标记及遗传连锁图谱的构建 | 第19-25页 |
| 1.5.1 DNA分子标记 | 第19-21页 |
| 1.5.2 分子标记遗传连锁图谱的构建 | 第21-25页 |
| 1.6 油菜细胞质雄性不育恢复基因的分子标记研究 | 第25-28页 |
| 1.6.1 pol CMS恢复基因的研究 | 第25-26页 |
| 1.6.2 Ogu CMS恢复基因的研究 | 第26-27页 |
| 1.6.3 其他胞质不育恢复基因的研究 | 第27-28页 |
| 1.7 本研究的目的与意义 | 第28-30页 |
| 第二章 野油胞质雄性不育三系的选育及研究 | 第30-55页 |
| 2.1 材料与方法 | 第30-31页 |
| 2.1.1 试验材料 | 第30页 |
| 2.1.2 主要试剂与仪器 | 第30页 |
| 2.1.3 田间育性调查 | 第30-31页 |
| 2.1.4 花粉活力鉴定 | 第31页 |
| 2.1.5 花器官形态观察比较 | 第31页 |
| 2.1.6 恢复基因等位性鉴定 | 第31页 |
| 2.1.7 恢保关系测定 | 第31页 |
| 2.2 结果与分析 | 第31-53页 |
| 2.2.1 不育系和保持系的选育 | 第31-37页 |
| 2.2.2 同质恢复系的选育 | 第37-46页 |
| 2.2.3 不育系1193A结实情况 | 第46-47页 |
| 2.2.4 育性基因遗传分析 | 第47-48页 |
| 2.2.5 花粉活力鉴定 | 第48-50页 |
| 2.2.6 花器官形态比较 | 第50-51页 |
| 2.2.7 恢复基因等位性鉴定 | 第51-52页 |
| 2.2.8 恢保关系测定 | 第52-53页 |
| 2.3 讨论 | 第53-55页 |
| 2.3.1 不育系1193A育性稳定,在甘蓝型油菜中有恢复源 | 第53-54页 |
| 2.3.2 关于不育系1193A的恢复基因 | 第54-55页 |
| 第三章 不育系1193A同工酶分析 | 第55-62页 |
| 3.1 材料与方法 | 第55-57页 |
| 3.1.1 材料 | 第55页 |
| 3.1.2 主要的试剂和仪器 | 第55-56页 |
| 3.1.3 实验方法 | 第56-57页 |
| 3.2 结果与分析 | 第57-59页 |
| 3.2.1 POD酶的分析 | 第57-58页 |
| 3.2.2 ATP酶的分析 | 第58页 |
| 3.2.3 EST酶的分析 | 第58-59页 |
| 3.3 讨论 | 第59-62页 |
| 3.3.1 POD酶与1193A雄性不育的关系 | 第59-60页 |
| 3.3.2 ATP酶与1193A雄性不育的关系 | 第60-61页 |
| 3.3.3 EST酶与1193A雄性不育的关系 | 第61-62页 |
| 第四章 不育系1193A的细胞学研究 | 第62-70页 |
| 4.1 材料与方法 | 第62-63页 |
| 4.1.1 实验材料 | 第62页 |
| 4.1.2 主要试剂和仪器 | 第62页 |
| 4.1.3 取样和固定 | 第62页 |
| 4.1.4 石蜡切片方法 | 第62-63页 |
| 4.2 结果与分析 | 第63-68页 |
| 4.2.1 保持系1193B正常花药细胞学特征 | 第63-65页 |
| 4.2.2 不育系1193A的花药细胞学特征 | 第65-68页 |
| 4.3 讨论 | 第68-70页 |
| 第五章 不育系1193A恢复基因的分子标记研究 | 第70-83页 |
| 5.1 材料与方法 | 第70-74页 |
| 5.1.1 实验材料 | 第70页 |
| 5.1.2 主要的试剂和仪器 | 第70-71页 |
| 5.1.3 SSR标记来源 | 第71页 |
| 5.1.4 群体育性调查和样品的保存 | 第71页 |
| 5.1.5 基因组DNA的提取 | 第71页 |
| 5.1.6 DNA纯度及浓度测定 | 第71-72页 |
| 5.1.7 基因池的构建 | 第72页 |
| 5.1.8 SNP芯片杂交 | 第72页 |
| 5.1.9 PCR扩增 | 第72-73页 |
| 5.1.10 SSR引物的筛选 | 第73页 |
| 5.1.11 PCR产物电泳检测 | 第73页 |
| 5.1.12 带型数据化与连锁图谱的构建 | 第73-74页 |
| 5.2 结果与分析 | 第74-80页 |
| 5.2.1 作图群体育性分析 | 第74页 |
| 5.2.2 群体基因组DNA质量检测 | 第74-75页 |
| 5.2.3 不育系1193A恢复基因的SSR标记分析 | 第75-78页 |
| 5.2.4 恢复基因的SNP标记分析 | 第78-80页 |
| 5.3 讨论 | 第80-83页 |
| 5.3.1 不育系1193A恢复系的标记辅助育种 | 第80-81页 |
| 5.3.2 不育系1193A恢复基因的预测 | 第81-83页 |
| 第六章 主要结论 | 第83-84页 |
| 第七章 论文不足之处与研究展望 | 第84-85页 |
| 7.1 论文不足之处 | 第84页 |
| 7.1.1 恢保关系测定 | 第84页 |
| 7.1.2 恢复基因的研究 | 第84页 |
| 7.2 研究展望 | 第84-85页 |
| 7.2.1 优良恢复系的选育及强优势杂交种的创制 | 第84页 |
| 7.2.2 恢复基因的研究 | 第84页 |
| 7.2.3 不育基因的研究 | 第84-85页 |
| 参考文献 | 第85-96页 |
| 附录1 | 第96-99页 |
| 附录2 | 第99-103页 |
| 附录3 | 第103-105页 |
| 致谢 | 第105-107页 |
| 作者简介 | 第107页 |
| 博士在读期间取得的科研成果和发表的学术论文 | 第107页 |