| 摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-6页 |
| 术语与缩略语表 | 第10-11页 |
| 1.文献综述 | 第11-23页 |
| 1.1 农药污染生物修复 | 第11页 |
| 1.2 农药微生物降解 | 第11-17页 |
| 1.2.1 农药微生物降解菌 | 第12-14页 |
| 1.2.1.1 真菌 | 第12-13页 |
| 1.2.1.2 细菌 | 第13-14页 |
| 1.2.1.3 放线菌和藻类 | 第14页 |
| 1.2.2 农药微生物降解的影响因素 | 第14-15页 |
| 1.2.2.1 农药的分子结构与浓度 | 第14页 |
| 1.2.2.2 微生物的影响 | 第14-15页 |
| 1.2.2.3 环境因素 | 第15页 |
| 1.2.3 农药微生物降解反应机理 | 第15-17页 |
| 1.2.3.1 酶促降解 | 第15-16页 |
| 1.2.3.2 非酶促降解 | 第16-17页 |
| 1.3 苯氧羧酸类除草剂微生物降解 | 第17-18页 |
| 1.4 2,4-D的概况 | 第18-20页 |
| 1.4.1 2,4-D的理化性质 | 第18-19页 |
| 1.4.2 2,4-D的除草机理 | 第19页 |
| 1.4.3 2,4-D的危害 | 第19-20页 |
| 1.5 2,4-D的环境行为 | 第20-23页 |
| 1.5.1 土壤吸附 | 第20页 |
| 1.5.2 环境中的降解 | 第20-23页 |
| 1.5.2.1 水中降解 | 第20-21页 |
| 1.5.2.2 土壤中降解 | 第21页 |
| 1.5.2.3 光化学降解 | 第21页 |
| 1.5.2.4 微生物降解 | 第21-23页 |
| 2.引言 | 第23-25页 |
| 2.1 研究目的和意义 | 第23-24页 |
| 2.2 研究内容 | 第24-25页 |
| 3.材料与方法 | 第25-37页 |
| 3.1 实验材料 | 第25-27页 |
| 3.1.1 供试土样 | 第25页 |
| 3.1.2 供试药品 | 第25-26页 |
| 3.1.3 仪器设备 | 第26页 |
| 3.1.4 培养基 | 第26页 |
| 3.1.5 2,4-D标准母液及工作溶液的配制 | 第26-27页 |
| 3.2 2,4-D降解菌的筛选、分离与鉴定 | 第27-30页 |
| 3.2.1 2,4-D降解菌富集培养 | 第27页 |
| 3.2.2 降解菌的分离与纯化 | 第27页 |
| 3.2.3 降解菌株的形态特征及生理生化鉴定 | 第27页 |
| 3.2.4 降解菌株 16S rDNA序列的测定与分子鉴定 | 第27-30页 |
| 3.2.4.1 降解菌基因组DNA提取 | 第27页 |
| 3.2.4.2 细菌 16S rDNA的片段的扩增与产物纯化 | 第27-28页 |
| 3.2.4.3 降解菌的 16S rDNA克隆与测序 | 第28-30页 |
| 3.3 降解菌株T1的生长曲线 | 第30页 |
| 3.4 降解菌株T1适宜生长温度与pH测定 | 第30-31页 |
| 3.5 降解菌株T1数量与OD值之间的对应关系测定 | 第31页 |
| 3.6 2,4-D无机盐添加回收实验 | 第31页 |
| 3.6.1 前处理方法 | 第31页 |
| 3.6.2 2,4-D的HPLC检测条件 | 第31页 |
| 3.7 降解菌株T1对 2,4-D的降解特性研究 | 第31-32页 |
| 3.7.1 初始浓度对菌株T1降解 2,4-D的影响 | 第31-32页 |
| 3.7.2 温度对菌株T1降解 2,4-D的影响 | 第32页 |
| 3.7.3 pH对菌株T1降解 2,4-D的影响 | 第32页 |
| 3.7.4 接菌量对菌株T1降解 2,4-D的影响 | 第32页 |
| 3.8 降解菌株T1的降解谱测定 | 第32-33页 |
| 3.8.1 降解谱实验方法 | 第32-33页 |
| 3.8.2 HPLC检测条件 | 第33页 |
| 3.9 菌株T1对 2,4-D的降解代谢产物研究 | 第33-35页 |
| 3.9.1 产物制备过程 | 第33页 |
| 3.9.2 GC-MS/MS检测条件 | 第33-34页 |
| 3.9.3 UPLC-MS/MS检测条件 | 第34-35页 |
| 3.9.3.1 液谱条件 | 第34页 |
| 3.9.3.2 质谱条件 | 第34-35页 |
| 3.10 菌株T1对 2,4-D降解产物 2,4-二氯苯酚(2,4-DCP)和 3, 5-二氯儿茶酚(3, 5-DCC)的降解 | 第35页 |
| 3.11 降解菌株T1菌剂的制备 | 第35-37页 |
| 3.11.1 正交实验设计 | 第35-36页 |
| 3.11.2 菌剂制备方法 | 第36页 |
| 3.11.3 降解菌菌剂的降解活性研究 | 第36-37页 |
| 4.结果与分析 | 第37-55页 |
| 4.1 2,4-D降解菌的筛选、分离与鉴定 | 第37-41页 |
| 4.1.1 降解性能的确定 | 第37页 |
| 4.1.2 菌株T1的形态特征及生理生化 | 第37-39页 |
| 4.1.3 菌株T1和T5的 16S rDNA序列分析 | 第39-41页 |
| 4.2 吉氏贪铜菌（Cupriavidus gilardii）的生长曲线 | 第41页 |
| 4.3 吉氏贪铜菌（C. gilardii）适宜生长温度与pH | 第41-42页 |
| 4.4 吉氏贪铜菌（C. gilardii）数量与OD值之间的对应关系 | 第42页 |
| 4.5 无机盐中 2,4-D添加回收结果 | 第42-43页 |
| 4.6 吉氏贪铜菌（C. gilardii）的降解特性研究 | 第43-47页 |
| 4.6.1 初始浓度对吉氏贪铜菌（C. gilardii）降解 2,4-D的影响 | 第43页 |
| 4.6.2 温度对吉氏贪铜菌（C.gilardii）降解 2,4-D的影响 | 第43-44页 |
| 4.6.3 pH对吉氏贪铜菌（C.gilardii）降解 2,4-D的影响 | 第44-45页 |
| 4.6.4 初始接菌量对吉氏贪铜菌（C.gilardii）降解 2,4-D的影响 | 第45-46页 |
| 4.6.5 吉氏贪铜菌（C.gilardii）的降解谱的测定 | 第46-47页 |
| 4.7 2,4-D的微生物降解途径 | 第47-52页 |
| 4.7.1 2,4-D降解产物分析 | 第47-52页 |
| 4.7.2 吉氏贪铜菌（C. gilardii）对 2,4-D降解产物 2,4-DCP和 3, 5-DCC的降解 | 第52页 |
| 4.8 降解菌吉氏贪铜菌（Cupriavidus gilardii）固定化条件的优化 | 第52-55页 |
| 4.8.1 不同组合降解菌菌剂的物理性能比较 | 第52-53页 |
| 4.8.2 不同组合固定化菌剂对 2,4-D降解的影响 | 第53-54页 |
| 4.8.3 最优组合固定化菌剂对 2,4-D的降解 | 第54-55页 |
| 5.讨论 | 第55-57页 |
| 6.结论 | 第57-58页 |
| 参考文献 | 第58-67页 |
| 致谢 | 第67-68页 |
| 个人简介 | 第68-69页 |
| 附表 | 第69-71页 |
