| 中文摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 缩略词表 | 第9-13页 |
| 第1章 绪论 | 第13-35页 |
| 1 术后认知功能障碍背景介绍 | 第13-18页 |
| 1.1 术后认知功能障碍 | 第13页 |
| 1.2 与术后认知功能障碍相关的因素 | 第13-15页 |
| 1.3 术后认知功能障碍的机制研究 | 第15-16页 |
| 1.4 术后认知功能障碍与阿尔茨海默病及麻醉的关系 | 第16-18页 |
| 2 麻醉药物的神经毒性 | 第18-22页 |
| 2.1 麻醉药物对新生大脑发育的影响 | 第18-21页 |
| 2.2 麻醉药物对成年大脑的影响 | 第21-22页 |
| 3 活性氧簇引起的线粒体损伤与细胞凋亡 | 第22-27页 |
| 3.1 活性氧簇 | 第22-23页 |
| 3.2 线粒体与细胞凋亡 | 第23-27页 |
| 4 维生素 C 的保护作用 | 第27-30页 |
| 4.1 维生素 C 对机体的保护作用 | 第27-29页 |
| 4.2 维生素 C 的转运 | 第29-30页 |
| 5 立题依据 | 第30-32页 |
| 6 技术路线 | 第32-35页 |
| 第2章 维生素 C 对异氟醚引起的细胞毒性的作用 | 第35-69页 |
| 2.1 试验材料 | 第35-38页 |
| 2.1.1 细胞 | 第35页 |
| 2.1.2 主要使用设备及试剂 | 第35-37页 |
| 2.1.3 溶液制备 | 第37-38页 |
| 2.1.4 统计软件 | 第38页 |
| 2.2 试验方法 | 第38-52页 |
| 2.2.1 细胞培养 | 第38-40页 |
| 2.2.2 活性氧簇 ROS 的检测 | 第40-41页 |
| 2.2.3 活性氧簇 ROS 染色试验 | 第41-42页 |
| 2.2.4 线粒体通透性转换孔 mPTP 的检测试验 | 第42-43页 |
| 2.2.5 JC-1 染色检测线粒体膜电势试验 | 第43-44页 |
| 2.2.6 TMRE 染色检测线粒体膜电势试验 | 第44-45页 |
| 2.2.7 ATP 检测试验 | 第45-46页 |
| 2.2.8 二苯基四氮唑溴盐（MTT）法检测细胞存活率 | 第46-47页 |
| 2.2.9 蛋白免疫印迹 Western Blotting | 第47-52页 |
| 2.2.10 数据统计 | 第52页 |
| 2.3 实验结果 | 第52-67页 |
| 2.3.1 抗氧化应激药物维生素 C 体外实验浓度的确定 | 第52-53页 |
| 2.3.2 活性氧簇 ROS 测定试验检测维生素 C 在麻醉过程中的作用 | 第53-55页 |
| 2.3.3 活性氧簇 ROS 染色试验 | 第55-57页 |
| 2.3.4 线粒体通透性转换孔 mPTP 测定试验 | 第57-59页 |
| 2.3.5 细胞线粒体膜电势测定试验 | 第59-61页 |
| 2.3.6 细胞 ATP 含量检测试验 | 第61-62页 |
| 2.3.7 Western blot 检测半胱氨酸天冬氨酸蛋白酶 Caspase-3的激活 | 第62-65页 |
| 2.3.8 MTT 检测细胞存活率的分析 | 第65-67页 |
| 2.4 本章小结 | 第67-69页 |
| 第3章 维生素C 对异氟醚引起的小鼠学习与记忆能力下降的作用 | 第69-79页 |
| 3.1 实验材料 | 第69页 |
| 3.1.1 实验小鼠 | 第69页 |
| 3.1.2 溶液制备 | 第69页 |
| 3.2 实验方法 | 第69-75页 |
| 3.2.1 小鼠麻醉 | 第69-71页 |
| 3.2.2 条件性恐惧实验 | 第71-74页 |
| 3.2.3 数据统计 | 第74-75页 |
| 3.3 实验结果 | 第75-78页 |
| 3.4 本章小结 | 第78-79页 |
| 讨论 | 第79-87页 |
| 全文总结 | 第87-89页 |
| 参考文献 | 第89-103页 |
| 作者简历 | 第103-105页 |
| 致谢 | 第105-106页 |
