| 致谢 | 第5-6页 |
| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 缩略词表 | 第13-14页 |
| 第一章 绪论 | 第14-29页 |
| 1.1 油茶蒲介绍 | 第14-17页 |
| 1.1.1 油茶与油茶蒲 | 第14-15页 |
| 1.1.2 油茶蒲的生物学功效 | 第15-17页 |
| 1.2 良性前列腺增生 | 第17-23页 |
| 1.2.1 良性前列腺增生简介 | 第17-18页 |
| 1.2.2 良性前列腺增生的发生机制 | 第18-20页 |
| 1.2.3 良性前列腺增生的治疗手段 | 第20-22页 |
| 1.2.4 良性前列腺增生药物开发的研究策略 | 第22-23页 |
| 1.3 5α-还原酶及其抑制剂 | 第23-26页 |
| 1.3.1 5α-还原酶 | 第23-25页 |
| 1.3.2 5α-还原酶抑制剂 | 第25-26页 |
| 1.4 本文研究的依据、意义和主要内容 | 第26-29页 |
| 1.4.1 研究依据 | 第26-27页 |
| 1.4.2 研究目的及意义 | 第27页 |
| 1.4.3 研究的主要内容 | 第27-29页 |
| 第二章 油茶蒲活性成分的提取分离与纯化精制 | 第29-44页 |
| 2.1 引言 | 第29页 |
| 2.2 材料试剂和仪器 | 第29-31页 |
| 2.2.1 材料试剂 | 第29-30页 |
| 2.2.2 仪器 | 第30-31页 |
| 2.3 实验方法 | 第31-34页 |
| 2.3.1 活性成分的提取 | 第31页 |
| 2.3.2 大孔树脂纯化 | 第31-32页 |
| 2.3.3 聚酰胺色谱纯化 | 第32-33页 |
| 2.3.4 高活性组分的液相制备 | 第33页 |
| 2.3.5 单体化合物的分离制备 | 第33页 |
| 2.3.6 精制组分高效液相分析 | 第33-34页 |
| 2.3.7 高效液相色谱-质谱联用(HPLC-MS/MS)分析 | 第34页 |
| 2.4 实验结果 | 第34-42页 |
| 2.4.1 活性成分的提取结果 | 第34页 |
| 2.4.2 大孔树脂纯化结果 | 第34-35页 |
| 2.4.3 聚酰胺纯化结果 | 第35页 |
| 2.4.4 聚酰胺纯化组分HPLC分析结果 | 第35-37页 |
| 2.4.5 Fr8液相制备结果 | 第37页 |
| 2.4.6 质谱分析 | 第37-40页 |
| 2.4.7 单体化合物的液相制备 | 第40-42页 |
| 2.5 本章结论 | 第42-44页 |
| 第三章 油茶蒲提取物活性组分对5α-还原酶的抑制活性 | 第44-54页 |
| 3.1 引言 | 第44页 |
| 3.2 材料试剂和仪器 | 第44-45页 |
| 3.2.1 材料试剂 | 第44-45页 |
| 3.2.2 实验仪器 | 第45页 |
| 3.3 实验方法 | 第45-48页 |
| 3.3.1 试剂的配制 | 第45页 |
| 3.3.2 大鼠5α-还原酶的提取方法 | 第45-46页 |
| 3.3.3 蛋白含量测定 | 第46页 |
| 3.3.4 酶提取物最适添加浓度的确定 | 第46页 |
| 3.3.5 5α-还原酶催化体系的稳定性 | 第46-47页 |
| 3.3.6 样品对5α-还原酶抑制活性测定方法 | 第47页 |
| 3.3.7 皂苷及总酚含量测定 | 第47-48页 |
| 3.3.8 统计学分析 | 第48页 |
| 3.4 实验结果 | 第48-52页 |
| 3.4.1 反应体系酶提取物添加浓度的确定 | 第48-49页 |
| 3.4.2 反应体系稳定性 | 第49-50页 |
| 3.4.3 非那雄胺的5α-还原酶抑制活性测定结果 | 第50页 |
| 3.4.4 油茶蒲提取物各纯化组分对5α-还原酶抑制活性测定结果 | 第50-51页 |
| 3.4.5 油茶蒲聚酰胺纯化组分皂苷、总酚含量与酶活的相关性分析 | 第51-52页 |
| 3.5 本章结论 | 第52-54页 |
| 第四章 油茶蒲活性组分对BPH-1细胞增殖和凋亡的影响 | 第54-63页 |
| 4.1 引言 | 第54页 |
| 4.2 材料和仪器 | 第54-55页 |
| 4.2.1 材料 | 第54-55页 |
| 4.2.2 仪器 | 第55页 |
| 4.3 实验方法 | 第55-57页 |
| 4.3.1 试剂的配置 | 第55页 |
| 4.3.2 BPH-1细胞基础操作 | 第55-56页 |
| 4.3.3 MTT法测定细胞增殖 | 第56页 |
| 4.3.4 Annexin V/PI双染色法测定细胞凋亡 | 第56-57页 |
| 4.3.5 统计学分析 | 第57页 |
| 4.4 实验结果 | 第57-61页 |
| 4.4.1 油茶蒲聚酰胺柱层析纯化组分对BPH-1细胞增殖抑制的结果 | 第57-58页 |
| 4.4.2 Fr8制备液相精制组分对BPH-1细胞增殖抑制的结果 | 第58-59页 |
| 4.4.3 纯化组分对BPH-1细胞凋亡的作用 | 第59-60页 |
| 4.4.4 纯化组分对BPH-1细胞形态的影响 | 第60-61页 |
| 4.5 本章结论 | 第61-63页 |
| 第五章 油茶蒲精制纯化组分F3对相关基因表达的调控 | 第63-69页 |
| 5.1 引言 | 第63页 |
| 5.2 材料与仪器 | 第63-64页 |
| 5.2.1 材料 | 第63页 |
| 5.2.2 仪器 | 第63-64页 |
| 5.3 实验方法 | 第64-66页 |
| 5.3.1 BPH-1细胞培养 | 第64页 |
| 5.3.2 RNA提取 | 第64-65页 |
| 5.3.3 RNA逆转录为cDNA | 第65页 |
| 5.3.4 RT-PCR | 第65-66页 |
| 5.4 实验结果 | 第66-67页 |
| 5.5 本章结论 | 第67-69页 |
| 第六章 结论与展望 | 第69-72页 |
| 6.1 结论 | 第69-70页 |
| 6.2 展望 | 第70-72页 |
| 参考文献 | 第72-76页 |
| 作者简介 | 第76页 |
