| 英文缩略词表 | 第7-8页 |
| 中文摘要 | 第8-10页 |
| Abstract | 第10-12页 |
| 前言 | 第13-17页 |
| 实验一 胰岛素对高糖环境下人牙周膜成纤维细胞(hPDLFs)增殖活性的影响 | 第17-31页 |
| 1. 实验对象 | 第17页 |
| 2. 实验材料、仪器 | 第17-19页 |
| 2.1 实验试剂 | 第17-18页 |
| 2.2 实验仪器与设备 | 第18-19页 |
| 2.3 实验试剂的配制 | 第19页 |
| 3. 实验方法 | 第19-23页 |
| 3.1 实验分组 | 第19-20页 |
| 3.2 酶消化结合组织块法hPDLCs原代培养 | 第20页 |
| 3.3 人牙周膜成纤维细胞(hPDLFs)的传代培养接种 | 第20-21页 |
| 3.4 细胞形态学观察 | 第21页 |
| 3.5 免疫荧光染色鉴定 | 第21页 |
| 3.6 检测细胞生长曲线 | 第21-22页 |
| 3.7 噻唑蓝(MTT)法检测 | 第22页 |
| 3.8 流式细胞仪检测细胞凋亡 | 第22-23页 |
| 3.9 统计学分析 | 第23页 |
| 4. 实验结果 | 第23-28页 |
| 4.1 人牙周膜成纤维细胞(hPDLFs)形态学观察 | 第23页 |
| 4.2 免疫组化 | 第23-24页 |
| 4.3 MTT法检测人牙周膜成纤维细胞(hPDLFs)生长曲线 | 第24-25页 |
| 4.4 流式细胞仪检测人牙周膜成纤维细胞(hPDLFs)增殖活性 | 第25-27页 |
| 4.5 流式细胞检测人牙周膜成纤维细胞(hPDLFs)凋亡 | 第27-28页 |
| 5. 讨论 | 第28-31页 |
| 实验二 胰岛素对高糖环境下人牙周膜成纤维细胞(hPDLFs)炎症因子的表达影响 | 第31-47页 |
| 1. 实验材料、仪器 | 第31-32页 |
| 1.1 实验试剂 | 第31-32页 |
| 1.2 实验仪器与设备 | 第32页 |
| 2. 实验方法 | 第32-34页 |
| 2.1 人牙周膜成纤维细胞(hPDLCs)炎症因子的表达 | 第33页 |
| 2.2 酶联免疫吸附法(ELISA)检测 | 第33-34页 |
| 2.3 实验数据统计学处理 | 第34页 |
| 3 实验结果 | 第34-42页 |
| 3.1 24h、48h、72h五组培养基对人牙周膜成纤维细胞(hPDLFs)TNF-α的表达 | 第34-36页 |
| 3.2 24h、48h、72h,五组培养基对人牙周膜成纤维细胞(hPDLFs)IL-1β的表达 | 第36-38页 |
| 3.3 24h、48h、72h,五组培养基对人牙周膜成纤维细胞(hPDLFs)IL-6的表达 | 第38-40页 |
| 3.4 24h、48h、72h,五组培养基对人牙周膜成纤维细胞(hPDLFs)人骨钙素的表达 | 第40-42页 |
| 4 讨论 | 第42-47页 |
| 参考文献 | 第47-53页 |
| 文献综述 | 第53-61页 |
| 参考文献 | 第56-61页 |
| 在读期间发表文章 | 第61-62页 |
| 致谢 | 第62-63页 |
