| 致谢 | 第5-7页 |
| 中文摘要 | 第7-12页 |
| Abstract | 第12-16页 |
| 缩略词表 | 第17-21页 |
| 第一章 月经血子宫内膜干细胞促进小鼠子宫内膜损伤修复的研究 | 第21-42页 |
| 背景 | 第21-22页 |
| 材料与方法 | 第22-30页 |
| 1. 实验动物 | 第22页 |
| 2. 小鼠子宫内膜损伤模型的构建 | 第22-24页 |
| 3. MenSCs培养和标记 | 第24-26页 |
| 4. MenSCs归巢于小鼠子宫损伤侧的鉴定 | 第26-27页 |
| 5. MenSCs对小鼠受损子宫内膜厚度的影响 | 第27-28页 |
| 6. MenSCs对受损子宫内膜微血管密度MVD的影响 | 第28-29页 |
| 7. 生育力评估 | 第29-30页 |
| 8. 统计学分析 | 第30页 |
| 结果 | 第30-35页 |
| 1. MenSCs归巢至子宫内膜损伤侧 | 第30-31页 |
| 2. MenSCs能够增加受损子宫内膜厚度和MVD,从而促进内膜修复 | 第31-34页 |
| 3. MenSCs治疗提高子宫内膜损伤小鼠的生育力 | 第34-35页 |
| 讨论 | 第35-37页 |
| 结论 | 第37页 |
| 参考文献 | 第37-42页 |
| 第二章 月经血子宫内膜间充质干细胞旁分泌作用促进血管生成的机制研究 | 第42-67页 |
| 背景 | 第42-43页 |
| 材料与方法 | 第43-52页 |
| 1. 人脐带静脉内皮细胞的培养(HUVECs) | 第43页 |
| 2. MenSCs的培养及条件培养液CM的制备 | 第43-44页 |
| 3. 细胞增殖实验 | 第44页 |
| 4. 凋亡实验 | 第44-45页 |
| 5. Transwell细胞迁移试验 | 第45-46页 |
| 6. 划痕修复试验 | 第46页 |
| 7. Matrigel胶血管形成实验 | 第46-47页 |
| 8. 体内小鼠基质栓血管形成试验 | 第47-48页 |
| 9. 定量逆转录聚合酶链反应(RT-PCR) | 第48-51页 |
| 10. 蛋白提取和蛋白电泳 | 第51-52页 |
| 11. 统计学分析 | 第52页 |
| 结果 | 第52-60页 |
| 1. MenSCs-CM抑制H_2O_2诱导的凋亡,并促进增殖 | 第52-53页 |
| 2. MenSCs-CM促进划痕修复和内皮细胞迁移 | 第53-54页 |
| 3. MenSCs的促血管生成作用 | 第54-55页 |
| 4. MenSC-CM在小鼠体内基质胶血管形成试验中的作用 | 第55-56页 |
| 5. MenSCs-CM激活内皮细胞的AKT和ERK途径,并增加其下游靶基因表达 | 第56-60页 |
| 讨论 | 第60-62页 |
| 结论 | 第62页 |
| 参考文献 | 第62-67页 |
| 第三章 月经血子宫内膜干细胞在子宫内膜纤维化中的作用 | 第67-81页 |
| 背景 | 第67-68页 |
| 材料与方法 | 第68-72页 |
| 1. MenSCs的培养及上清液的制备见第一章节和第二章节 | 第68页 |
| 2. 间质细胞的提取与培养步骤 | 第68-69页 |
| 3. 内膜标本的收集 | 第69页 |
| 4. 组织RNA的提取 | 第69-70页 |
| 5. Gli2转染 | 第70-71页 |
| 6. 细胞流式技术鉴定细胞周期 | 第71-72页 |
| 7. 蛋白电泳及qRT-PCR | 第72页 |
| 结果 | 第72-76页 |
| 讨论 | 第76-77页 |
| 结论 | 第77页 |
| 参考文献 | 第77-81页 |
| 全文结论和创新点 | 第81-82页 |
| 综述 宫腔粘连分离术后的治疗进展 | 第82-100页 |
| 参考文献 | 第91-100页 |
| 作者简历 | 第100页 |
